ДИНАМИКА CD14+СD16+ СУБПОПУЛЯЦИЙ МОНОЦИТОВ ПРИ НЕОСЛОЖНЕННОМ СИСТЕМНОМ ВОСПАЛИТЕЛЬНОМ ОТВЕТЕ В ПЕРИОПЕРАЦИОННОМ ПЕРИОДЕ КОРОНАРНОГО ШУНТИРОВАНИЯ

Резюме. В различные сроки периоперационного периода была исследована динамика содержания цитокинов в сыворотке крови и экспрессии поверхностных антигенов CD14 и СD16 на моноцитах у пациентов, перенесших коронарное шунтирование в условиях искусственного кровообращения. Было показано, что в раннем послеоперационном периоде имеется связь между тяжестью органных дисфункций, оцененной по шкале SOFA, и содержанием в крови IL-6, IL-10. К 1-м суткам после операции меняется субпопуляционный состав моноцитов за счет снижения относительного содержания CD14hiCD16– и увеличения CD14hiCD16+. На поверхности моноцитов CD14hiCD16– уменьшается уровень экспрессии CD14 и повышается экспрессия рецептора CD16. Выявленная связь между относительным содержанием в крови моноцитов CD14hiCD16–, уровнем экспрессии CD16 на субпопуляции CD14hiCD16+ и оценкой в баллах по шкале SOFA свидетельствует о значительном вкладе указанных субпопуляций в характер течения раннего послеоперационного периода.

1. Бокерия Л.А., Мерзляков В.Ю., Ключников И.В., Скопин А.И., Мамедова С.К., Мамаев Х.К., Желихажева М.В. Оценка отдаленных результатов и качества жизни пациентов после операции реваскуляризации миокарда на работающем сердце // Бюллетень НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН. – 2007. – Т. 8, № 3. – С. 28-34.

2. Гельфанд Е.Б., Гологорский В.А., Гельфанд Б.Р. Клиническая характеристика абдоминального сепсиса у хирургических больных // Интенсивная терапия. – 2000. – № 1.

3. Гусев Е.Ю., Черешнев В.А., Юрченко Л.Н. Системное воспаление с позиции теории типового патологического процесса// Цитокины и воспаление. – 2007. – Т. 6 (4). – С. 9-21.

4. Гусев Е.Ю., Юрченко Л.Н., Черешнев В.А., Зотова Н.В., Журавлева Ю.А., Зубова Т.Э., Руднов В.А., Кузьмин В.В., Макарова Н.П., Лейдерман И.Н., Левит Д.А., Суханов В.А., Сипачев А.С., Бражников А.Ю., Решетникова С.Ю., Засорин А.А., Дрозд А.В. Вариантыразвития острого системного воспаления // Цитокины и воспаление. – 2008. – Т. 7 (2). – C. 9-17.

5. Шляпников С.А. Проблемы классификации, диагностики и лечения сепсиса // Интенсивная терапия. – 2002. – Т. 4 (1). – С. 14-16.

6. Adib-Conquy M., Cavaillon J.M. Compensatory anti-inflammatory response syndrome // Thromb. Haemost. – 2009. – 101 (1). – P. 36-47.

7. Ancuta P., Rao R., Moses A., Mehle A., Shaw S.K., Luscinskas F.W., Gabuzda D. Fractalkine Preferentially Mediates Arrest and Migration of CD16+ Monocytes // JEM June 16. – 2003. – Vol. 197 (12).–P. 1701-1707.

8. Andreesen R., Brugger W., Scheibenbogen C., Kreutz M., Leser H.G., Rehm A., L hr G.W. Surface phenotype analysis of human monocyte to macrophage maturation // J. Leukoc. Biol. –1990. – Vol. 47. – P. 490-497.

9. Calzada-Wack J.C., Frankenberger M., Ziegler-Heitbrock H.W. Interleukin-10 drives human monocytes to CD16 positive macrophages // J. Inflamm. – 1996. – 46 (2). – P. 78-85.

10. Cros J., Cagnard N., Woollard K., Patey N., Zhang S.Y., Senechal B., Puel A., Biswas S.K., Moshous D., Picard C., Jais J.P., D’Cruz D., Casanova J.L., Trouillet C., Geissmann F. Human CD14dim monocytes patrol and sense nucleic acids and viruses via TLR7 and TLR8 receptors // Immunity. – 2010. – Sep 24. – 33 (3). – P. 375-386.

11. Hiesmayr M. J., Spittler A., Lassnigg A., Berger R., Laufer G., Kocher A., Artemiou O., Boltz-Nitulescu G., Roth E. Alterations in the number of circulating leucocytes, phenotype of monocyte and cytokine production in patients undergoing cardiothoracic surgery // Clin. Exp. Immunol. –1999. – Vol. 115 (2). – P. 315–323.

12. Merino A., Buendia P., Martin-Malo A., Aljama P., Ramirez R., Carracedo J. Senescent CD14+ CD16+ Monocytes Exhibit Proinflammatory and Proatherosclerotic Activity // J. Immunol. – 2010. – 186. – P. 1809-1815.

13. Nahrendorf M., Swirski F.K., Aikawa E., Stangenberg L., Wurdinger T., Figueiredo J., Libby P., Weissleder R., Pittet M. The healing myocardium sequentially mobilizes two monocyte subsets with divergent and complementary functions // J. Exp. Med. – 2007. – Vol. 204. – P. 3037-3047.

14. Sander M., Heymann C., Dossow V., Spaethe C., Konertz W.F., Jain U., Spies C.D. Increased Interleukin-6 after cardiac surgery рredicts Infection // Anesth. Analg. – 2006. – Vol. 102. – P. 1623-1629.

15. Serbina N.V., Jia T., Hohl T.M., Pamer E.G. Monocyte-mediated defense against microbial pathogens // Annu. Rev. Immunol. – 2008. – Vol. 26. – P. 421-452.

16. Shigeto Oda, Hirasawa H., Shiga H., Nakanishi K., Matsuda K., Nakamua M. Sequential measurement of IL-6 blood levels in patients with systemic inflammatory response syndrome (SIRS)/ sepsis // Cytokine. – 2005. – Vol. 29. – P. 169-175.

17. Shinji Hirai. Systemic Inflammatory Response Syndrome after Cardiac Surgery under Cardiopulmonary Bypass // Ann. Thorac. Cardiovasc. Surg. – 2003. – Vol. 9. (6). – P. 365 – 370.

18. Skinner N.A., Maclsaac C.M., Hamilton J.A., Visvanathan K. Regulation of Toll-like receptor (TLR)2 and TLR4 on CD14dimCD16+ monocytes in response to sepsis-related antigens // Clin. Exp. Immunol. – 2005. – Vol. 141 (2). – P. 270-278.

19. Steppich B., Dayyani F., Gruber R., Lorenz R., Mack M.H., Ziegler-Heitbrock W.L. Selective mobilization of CD14+CD16+ monocytes by exercise // Am. J. Physio. l Cell Physiol. – 2000. – Vol. 279. – P. 578-586.

20. Tallone T., Turconi G., Soldati G., Pedrazzini G., Moccetti T., Vassalli G. Heterogeneity of Human Monocytes: An Optimized Four-Color Flow Cytometry Protocol for Analysis of Monocyte Subsets // J. of Cardiovasc. Trans. Res. – 2011. – 4. – P. 211-219.

21. Yasunori Iwata, Furuichi K, Kitagawa K, Hara A., Okumura T., Kokubo S., Shimizu K., Sakai N., Sagara A., Kurokawa Y., Ueha S., Matsushima K., Kaneko S., Wada T. Involvement of CD11b+ GR-1low cells in autoimmune disorder in MRL-Faslpr mouse // Clin. Exp. Nephrol. – 2010. – 14 (5). – P. 411-417.

22. Ziegler-Heitbrock H. Definition of human blood monocytes // J. of Leukocyte Biology. – 2000. – Vol. – P. 603-606.

23. Ziegler-Heitbrock L. The CD14+ CD16+blood monocytes: their role in infection and inflammation // J. of Leukocyte Biology. – 2007. –Vol. 81. – Issue: 3. – P. 584-592.