Preview

Медицинская иммунология

Расширенный поиск

ОПСОНИЗИРУЮЩИЕ СВОЙСТВА КОММЕРЧЕСКОГО АНТИСТАФИЛОКОККОВОГО ИММУНОГЛОБУЛИНА

https://doi.org/10.15789/1563-0625-2012-1-2-95-102

Полный текст:

Аннотация

Резюме. Антистафилококковый иммуноглобулин широко применяется для лечения заболеваний стафилококковой этиологии. Однако, в русскоязычной литературе отсутствуют сведения, обосновывающие эффективность данного препарата с позиций доказательной медицины. Учитывая решающую роль фагоцитоза в защите макроорганизма от патогенных стафилококков и значение опсонизации для фагоцитарных реакций, проведено исследование опсонизирующей активности антистафилококкового иммуноглобулина по отношению к S. aureus Wood 46 и S. aureus Cowan I. В качестве препарата сравнения использован иммуноглобулин человеческий нормальный. Оба препарата в одинаковой степени влияют на кислородзависимую бактерицидность фагоцитов. Нормальный иммуноглобулин активнее, чем антистафилококковый, усиливает поглотительную активность нейтрофилов и образование агрегатов бактерий. Анализ результатов исследования, а также сообщений в отечественных и зарубежных источниках литературы, ставят под сомнение целесообразность использования антистафилококкового иммуноглобулина в лечении инфекций стафилококковой этиологии.

Об авторах

С. В. Слободчикова
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН, г. Пермь
Россия
614081, г. Пермь, ул. Голева, 13. Тел.: (342) 280-74-42, 280-83-34. Факс: (342) 280-92-11


К. В. Шмагель
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН, г. Пермь Пермская государственная медицинская академия им. акад. Е.А. Вагнера, г. Пермь
Россия




Список литературы

1. Выгодчиков Г.В. Стафилококковые инфекции (микробиология, иммунология и эпидемиология). – M.: Медгиз, 1963. – 272 c.

2. Карницкая Н.В., Левина М.Н., Лукатос Е.А. Нормальный γ-глобулин человека как носитель специфических антистафилококковых антител // Препараты нормальных и специфических иммуноглобулинов человека. Сборник научных трудов Московского НИИ эпидемиологии и микробиологии. – 1975. – Т. XVIII. – C. 102-106.

3. Кленин В.И., Щеголев С.Ю., Лаврушин В.И. Характеристические функции светорассеяния дисперсных систем. – Изд-во Саратовского университета. – 1977. – 177 с.

4. Королевская Л.Б., Шмагель К.В. Спектротурбидиметрическое определение размера иммунных агрегатов сывороток крови, образованных в полиэтиленгликоле // Иммунология. – 2010. – № 2. – С. 108-111.

5. Пинегин Б.В., Ярилин А.А., Симонова А.В., Климова С.В, Мазуров Д.В, Дамбаева С.В., Бахус Г.О. Оценка поглотительной активности фагоцитов периферической крови человека // Применение проточной цитометрии для оценки функциональной активности иммунной системы человека. Пособие для врачей лаборантов. – М., 2001. – С. 31-35.

6. Слободчикова С.В., Шмагель К.В., Раев М.Б., Бахметьев Б.А. Влияние человеческого трофобластического β1-гликопротеина на стимулированную люминолзависимую хемилюминесценцию лейкоцитов // Российский иммунологический журнал. – 2009. – № 3 (12). – С. 338-342.

7. Aydogan M., Eifan A.O., Gocmen I., Ozdemir C., Bahceciler N.N., Barlan I.B. Clinical and Immunologic Features of Pediatric Patients With Common Variable Immunodeficiency and Respiratory Complications // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. – 2008. – Vol. 18, N 4. – P. 260-265.

8. Champion J.A., Walker A., Mitragotri S. Role of Particle Size in Phagocytosis of Polymeric Microspheres // Pharm. Res. – 2008. – Vol. 25, N 8. – P. 1815-1821.

9. DeLeo F.R., Diep B.A., Otto M. Host defense and pathogenesis in Staphylococcus aureus infections // Infect. Dis. Clin. North. Am. – 2009. – Vol. 23, N 1. – P. 17-34.

10. Dryla A., Prustomersky S., Gelbmann D., Hanner M., Bettinger E., Kocsis B., Kustos T., Henics T., Meinke A., Nagy E. Comparison of Antibody Repertoires against Staphylococcus aureus in Healthy Individuals and in Acutely Infected Patients // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 2005. – Vol. 12, N 3. – P. 387-398.

11. Durandy A., Kaveri S.V., Kuijpers T.W., Basta M., Miescher S., Ravetch J.V., Rieben R. Intravenous immunoglobulins – understanding properties and mechanisms // Clinical and Experimental Immunology. – 2009. – Vol. 158. – P. 2-13.

12. Garcıa-Garcıa E., Rosales C. Signal transduction during Fc receptor-mediated phagocytosis // J. Leukoc. Biol. – 2002. – Vol. 72. – P. 1092-1108.

13. Ishikawa Y., Muramatsu N., Ohshima H., Kondo T. Effect of particle size on phagocytosis of latex particles by guinea-pig polymorphonuclear leucocytes // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. – 1991. – N 2 (1). – P. 53-60.

14. Iwatsuki K., Yamasaki O., Morizane S., Oono T. Staphylococcal cutaneous infections: Invasion, evasion and aggression // Journal of Dermatological Science. – 2006. – Vol. 42. – P. 203-214.

15. Kelly J. Immunotherapy against antibioticresistant bacteria: the Russian experience with an antistaphylococcal hyperimmune plasma and immunoglobulin // Microbes and Infection. – 2000. – N 2. – P. 1383-1392.

16. Kluytmans J., Belkum van A., Verbrugh H. Nasal carriage of Staphylococcus aureus: epidemiology, underlying mechanisms, and associatedrisks // Clin. Microbiol. Rev. – 1997. – Vol. 10, N 3. – P. 505-520.

17. Lekstrom-Himes J.A., Gallin J.I. Immunodeficiency diseases caused by defects in phagocytes // The New England Journal of Medicine. – 2000. – Vol. 343, N 23. – P. 1703-1714.

18. Middleton J.R. Staphylococcus aureus antigens and challenges in vaccine development // Expert Rev. Vaccines. – 2008. – Vol. 7, N 6. – P. 805-815.

19. Molne L., Verdrengh M., Tarkowski A. Role of neutrophil leukocytes in cutaneous infection caused by Staphylococcus aureus // Infection and immunity. – 2000. – Vol. 68, N 11. – P. 6162-6167.

20. Pease L.F., Elliott J.T., Tsai D.H., Zachariah M.R., Tarlov M.J. Determination of Protein Aggregation With Differential Mobility Analysis: Application to IgG Antibody // Biotechnol. Bioeng. – 2008. – Vol. 101. – P. 1214-1222.

21. Pross H., Eidinger D. In vitro Stuides of ‘Antigenic Competition’ II. Reconstitution of the immune defect and the relationship between antigeninduced supression and non-specific enhancement // lmmunology. – 1973. – Vol. 25. – P. 269.

22. Quie P.G., Cates K.L. Clinical conditions associated with defective polymorphonuclear leukocyte chemotaxis // Am. J. Pathol. – 1977. – Vol. 88, N 3. – P. 711-725.

23. Singh B.R., Chandra M., Agrawal R.K., Nagrajan B. Antigenic competition among different ‘O’ antigens of Salmonella enterica subspecies enterica serovars during hyperimmunization in pony mares // Indian. J. Exp. Biol. – 2006. – Vol. 44, N 12. – P. 1022-1025.

24. Yamada S. Chemiluminescence response of human phagocytes against IgG-opsonized staphylococci with and without protein A activities // Microbiol. Immunol. – 1990. – Vol. 34, N 3. – P. 221-229.


Для цитирования:


Слободчикова С.В., Шмагель К.В. ОПСОНИЗИРУЮЩИЕ СВОЙСТВА КОММЕРЧЕСКОГО АНТИСТАФИЛОКОККОВОГО ИММУНОГЛОБУЛИНА. Медицинская иммунология. 2012;14(1-2):95-102. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2012-1-2-95-102

For citation:


Slobodchikova S.V., Schmagel K.V. OPSONIZING PROPERTIES OF A COMMERCIAL ANTISTAPHYLOCOCCAL IMMUNOGLOBULIN. Medical Immunology (Russia). 2012;14(1-2):95-102. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/1563-0625-2012-1-2-95-102

Просмотров: 427


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1563-0625 (Print)
ISSN 2313-741X (Online)