Активация базофилов: теоретические аспекты и применение в диагностике аллергических заболеваний

Диагностика аллергических заболеваний является непростой задачей, требующей решения ввиду высокой частоты встречаемости этой патологии среди населения. В обзоре делается упор на комплексную диагностику, включающую различные методы, наиболее востребованные на современном этапе. Диагностика аллергии в первую очередь включает сбор анамнеза, физикальный осмотр, инструментальные и функциональные тесты, реже используется провокационные пробы ввиду возможности тяжелых реакций при их проведении. На современном этапе растет роль лабораторной диагностики аллергии, поскольку с одной стороны наблюдается увеличение сложно диагносцируе-мых случаев, требующих привлечения всего арсенала средств современной медицины, а с другой — улучшается чувствительность и специфичность лабораторных тестов. Среди лабораторных методов наиболее значимыми являются оценка уровня специфических IgE и относительно новый тест активации базофилов, которому в обзоре уделяется основное внимание. Он является функциональным и сочетает в себе преимущества провокационных проб, при проведении которых создаются условия для взаимодействия возможного аллергена и клеток-эффекторов аллергического воспаления с безопасностью для пациента. В статье приводятся данные о жизненном цикле базофилов, экспрессии ими мембранных рецепторов, содержимом гранул, возможности синтеза дополнительных медиаторов воспалительных реакций. Рассматривается участие этих клеток в патогенезе аллергического воспаления. Обсуждаются различные механизмы активации базофилов, как IgE-опосредованные, так и IgE-независимые, схожие in vivo и in vitro. Проводится теоретическое обоснование использования теста активации базофилов in vitro для оценки сенсибилизации организма к широкому спектру аллергенов. Приводятся данные о высокой чувствительности и специфичности теста для диагностики аллергии к пищевым, бытовым, пыльцевым, инсектным и лекарственным аллергенам. Рассматривается возможность использования данного теста для оценки эффективности аллергенспецифической и анти-IgE терапии. Указываются особенности теста активации базофилов, касающиеся преаналитического, аналитического и постаналитического этапов исследования. Известны факторы, влияющие на оценку данного метода. Например, затруднения при интерпретации теста могут возникнуть на фоне приема глюкокортикостероидных гормонов, в остром периоде воспаления, при выраженных отеках. В обзоре проводится сравнение теста активации базофилов, определения специфических IgE и кожных тестов по различным параметрам, касающимся проведения и интерпретации результатов данных методов. Комплексная диагностика аллергических заболеваний, в том числе с применением патогенетически обусловленных лабораторных методов, будет способствовать адекватному лечению и вследствие этого улучшению здоровья населения.

1. Бычкова Н.В. Применение метода проточной цитометрии для диагностики аллергических заболеваний // Справочник заведующего КДЛ, 2016. № 4. С. 21-29.

2. Козлова Я.И., Учеваткина А.Е., Бычкова Н.В., Филиппова Л.В., Аак О.В., Пятакова А.В., Фролова Е.В., Давыдова Н.И., Климко Н.Н. Тест активации базофилов в диагностике аллергического бронхолегочного аспергиллеза // Клиническая микология, 2016. Т. 18, № 3. С. 7-11.

3. Лабис В.В., Базикян Э.А., Сизова С.В., Железный В.В., Бычкова Н.В., Козлов И.Г. Базофильный тест в практической медицине // Практическая медицина, 2019. № 1. С. 76-79.

4. Мясникова Т.Н., Романова Т.С., Хлудова Л.Г., Латышева Т.В. Диагностика лекарственной аллергии: современный взгляд на проблему // Российский медицинский журнал, 2018, № 8 (I), С. 28-32.

5. Николаев Н.С., Назарова В.В., Добровольская Н.Ю., Пчелова Н.Н., Орлова А.В. Постаналитический этап: управление качеством клинических лабораторных исследований // Менеджер здравоохранения, 2016. № 8. С. 36-45.

6. Новик Г.А., Халева Е.Г., Жданова М.В., Бычкова Н.В. Открытое проспективное контролируемое пострегистрационное исследование эффективности и безопасности длительного применения аминокислотной смеси у детей первого года жизни с аллергией к белкам коровьего молока // Вестник Российской академии медицинских наук, 2016. Т. 71, № 6. С. 446-457.

7. Синельникова Н.А., Бычкова Н.В., Калинина Н.М. Особенности иммунного ответа и активации базофилов у детей с хронической крапивницей // Медицинская иммунология, 2015, Т. 17, № 1. С. 39-46. doi: 10.15789/1563-0625-2015-1-39-46.

8. Федеральные клинические рекомендации по диагностике аллергических заболеваний // Клинические рекомендации. Аллергология и клиническая иммунология / Под ред. Хаитова Р.М., Ильиной Н.И. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019. С. 170-189.

9. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению аллергического ринита // Клинические рекомендации. Аллергология и клиническая иммунология / Под ред. Хаитова Р.М., Ильиной Н.И. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019. С. 34-51.

10. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению аллергического конъюнктивита // Клинические рекомендации. Аллергология и клиническая иммунология / Под ред. Хаитова Р.М., Ильиной Н.И. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019. С. 22-33.

11. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению лекарственной аллергии // Клинические рекомендации. Аллергология и клиническая иммунология / Под ред. Хаитова Р.М., Ильиной Н.И. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019. С. 190-213.

12. Федеральные клинические рекомендации по оказанию медицинской помощи детям с пищевой аллергией, 2015 [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://nrcii.ru/docs/Klinicheskie_rekomendacii_po_diagnostike_AZ.pdf.

13. Федеральные клинические рекомендации. Атопическая бронхиальная астма // Клинические рекомендации. Аллергология и клиническая иммунология / Под ред. Хаитова Р.М., Ильиной Н.И. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019. С. 90-136.

14. Aberer W, Bircher A., Romano A., Blanca M., Campi P., Fernandez J., Brockow K., Pichler WJ., Demoly P.; European Network for Drug Allergy (ENDA); EAACI interest group on drug hypersensitivity. Drug provocation testing in the diagnosis of drug hypersensitivity reactions: general considerations. Allergy, 2003, Vol. 58, no. 9, pp. 854-863.

15. Alpan O., Layhadi J., S0nder S.U., Li H., Shamji M.H. Basophil activation test: a diagnostic, predictive and monitoring assay for allergen immunotherapy. Allergy, 2020. doi: 10.1111/all.14585.

16. Ansotegui I.J., Melioli G., Canonica G.W, Caraballo L., Villa E., Ebisawa M., Passalacqua G., Savi E., Ebo D., Gomez R.M., Luengo Sanchez O., Oppenheimer J.J., Jensen-Jarolim E., Fischer D.A., Haahtela T., Antila M., Bousquet J.J., Cardona V., Chiang W.C., Demoly P.M., DuBuske L.M., Ferrer Puga M., Gerth van Wijk R., Gonzalez Diaz S.N., Gonzalez-Estrada A., Jares E., Kalpaklioglu A.F., Kase Tanno L., Kowalski M.L., Ledford D.K., Monge Ortega O.P., Morais Almeida M., Pfaar O., Poulsen L.K., Pawankar R., Renz H.E., Romano A.G., Rosario Filho N.A., Rosenwasser L., Sanchez Borges M.A., Scala E., Senna G.E., Sisul J.C., Tang M.L.K., Thong B.Y., Valenta R., Wood R.A., Zuberbier T. IgE allergy diagnostics and other relevant tests in allergy, a World Allergy Organization position paper. World Allergy Organ J., 2020, Vol. 13, no. 2, 100080. doi: 10.1016/j.waojou.2019.100080.

17. Aranda A., Mayorga C., Ariza A., Dona I., Rosado A., Blanca-Lopez N., Andreu I., Torres M.J. In vitro evaluation of IgE-mediated hypersensitivity reactions to quinolones. Allergy, 2011, Vol. 66, no. 2, pp. 247-254.

18. Arock M., Schneider E., Boissan M., Tricottet V, Dy M. Differentiation of human basophils: an overview of recent advances and pending questions. J. Leukoc. Biol., 2002, Vol. 71, no. 4, pp. 557-564.

19. Blank U., Falcone F.H., Nilsson G. The history of mast cell and basophil research - some lessons learnt from the last century. Allergy, 2013, Vol. 68, no. 9, pp. 1093-1101.

20. Boita M., Heffler E., Omede P., Bellocchia M., Bussolino C., Solidoro P., Giorgis V., Guerrera F., Riva G., Brussino L., Bucca C., Rolla G. Basophil membrane expression of epithelial cytokine receptors in patients with severe asthma. Int. Arch. Allergy Immunol., 2018, Vol. 175, no. 3, pp. 171-176.

21. Boumiza R., Monneret G., Forissier M.F., Savoye J., Gutowski M.C., Powell W.S., Bienvenu J. Marked improvement of the basophil activation test by detecting CD203c instead of CD63. Clin. Exp. Allergy, 2003, Vol. 33, no. 2, pp. 259-265.

22. Boumiza R., Debard A.L., Monneret G. The basophil activation test by flow cytometry: recent developments in clinical studies, standardization and emerging perspectives. Clin. Mol. Allergy, 2005, Vol. 3, 9. doi: 10.1186/1476-7961-3-9.

23. Brockow K., Garvey L.H., Aberer W., Atanaskovic-Markovic M., Barbaud A., Bilo M.B., Bircher A., Blanca M., Bonadonna B., Campi P., Castro E., Cernadas J.R., Chiriac A.M., Demoly P., Grosber M., Gooi J., Lombardo C., Mertes P.M., Mosbech H., Nasser S., Pagani M., Ring J., Romano A., Scherer K., Schnyder B., Testi S., Torres M., Trautmann A., Terreehorst I.; ENDA/EAACI Drug Allergy Interest Group. Skin test concentrations for systemically administered drugs - an ENDA/EAACI Drug Allergy Interest Group position paper. Allergy, 2013, Vol. 68, no. 6, pp. 702-712.

24. Brockow K., Przybilla B., Aberer W., Bircher A.J., Brehler R., Dickel H., Fuchs T., Jakob T., Lange L., Pfutzner W, Mockenhaupt M., Ott H., Pfaar O., Ring J., Sachs B., Sitter H., Trautmann A., Treudler R., Wedi B., Worm M., Wurpts G., Zuberbier T., Merk H.F. Guideline for the diagnosis of drug hypersensitivity reactions: S2K-Guideline of the German Society for Allergology and Clinical Immunology (DGAKI) and the German Dermatological Society (DDG) in collaboration with the Association of German Allergologists (AeDA), the German Society for Pediatric Allergology and Environmental Medicine (GPA), the German Contact Dermatitis Research Group (DKG), the Swiss Society for Allergy and Immunology (SGAI), the Austrian Society for Allergology and Immunology (OGAI), the German Academy of Allergology and Environmental Medicine (DAAU), the German Center for Documentation of Severe Skin Reactions and the German Federal Institute for Drugs and Medical Products (BfArM). Allergo J. Int., 2015, Vol. 24, no. 3, pp. 94-105.

25. Caimmi D., Manca E., Carboni E., Demoly P. How molecular allergology can shape the management of allergic airways diseases. Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol., 2020, Vol. 20, no. 2, pp. 149-154.

26. Campo P., Eguiluz-Gracia I., Bogas G., Salas M., Plaza Seron C., Perez N., Mayorga C., Torres M.J., Shamji M.H., Rondon C. Local allergic rhinitis: implications for management. Clin. Exp. Allergy, 2019, Vol. 49, no. 1, pp. 6-16.

27. Campos L., Galvao V.R., Kalil J., Castells M., Giavina-Bianchi P. BAT in the diagnosis of drug allergy: a novel tool in clinical daily practice? Curr. Allergy Asthma Rep., 2019, Vol. 19, no. 4, 20. doi: 10.1007/s11882-019-0852-8.

28. Chirumbolo S., Vella A., Ortolani R., De Gironcoli M., Solero P, Tridente G., Bellavite P Differential response of human basophil activation markers: a multi-parameter flow cytometry approach. Clin. Mol. Allergy, 2008, Vol. 6, 12. doi: 10.1186/1476-7961-6-12.

29. Datema M.R., Zuidmeer-Jongejan L., Asero R., Barreales L., Belohlavkova S., de Blay F., Bures P, Clausen M., Dubakiene R., Gislason D., Jedrzejczak-Czechowicz M., Kowalski M.L., Knulst A.C., Kralimarkova T., Le T.M., Lovegrove A., Marsh J., Papadopoulos N.G., Popov T., Del Prado N., Purohit A., Reese G., Reig I., Seneviratne S.L., Sinaniotis A., Versteeg S.A., Vieths S., Zwinderman A.H., Mills C., Lidholm J., Hoffmann-Sommergruber K., Fernandez-Rivas M., Ballmer-Weber B., van Ree R. Hazelnut allergy across Europe dissected molecularly: a EuroPrevall outpatient clinic survey. J. Allergy Clin. Immunol., 2015, Vol. 136, no. 2, pp. 382-291.

30. Eberlein B., Leon Suarez I., Darsow U., R^ff F., Behrendt H., Ring J. A new basophil activation test using CD63 and CCR3 in allergy to antibiotics. Clin. Exp. Allergy, 2010, Vol. 40, no. 3, pp. 411-418.

31. Ebo D.G., Bridts C.H., Hagendorens M.M., Aerts N.E., De Clerck L.S., Stevens WJ. Basophil activation test by flow cytometry: present and future applications in allergology. Cytometry B Clin. Cytom., 2008, Vol. 74, no. 4, pp. 201-210.

32. Gamboa PM., Sanz M.L., Lombardero M., Barber D., Sanchez-Monje R., Goikoetxea M.J., Antepara I., Ferrer M., Salcedo G. Component-resolved in vitro diagnosis in peach-allergic patients. J. Investig. Allergol. Clin. Immunol., 2009, Vol. 19, no. 1, pp. 13-20.

33. Giavina-Bianchi P, Galvao V.R., Picard M., Caiado J., Castells M.C. Basophil activation test is a relevant biomarker of the outcome of rapid desensitization in platinum compounds-allergy. J. Allergy Clin. Immunol. Pract., 2017, Vol. 5, no. 3, pp. 728-736.

34. Gomez E., Campo P, Rondon C., Barrionuevo E., Blanca-Lopez N., Torres M.J., Herrera R., Galindo L., Mayorga C., Blanca M. Role of the basophil activation test in the diagnosis of local allergic rhinitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2013, Vol. 132, no. 4, pp. 975-976.e1-5.

35. Grattan C.E., Dawn G., Gibbs S., Francis D.M. Blood basophil numbers in chronic ordinary urticaria and healthy controls: diurnal variation, influence of loratadine and prednisolone and relationship to disease activity. Clin. Exp. Allergy, 2003, Vol. 33, no. 3, pp. 337-341.

36. Han X., Jorgensen J.L., Brahmandam A., Schlette E., Huh Y.O., Shi Y., Awagu S., Chen W. Immunophenotypic study of basophils by multiparameter flow cytometry. Arch. Pathol. Lab. Med., 2008, Vol. 132, no. 5, pp. 813-819.

37. Hausmann O.V., Gentinetta T., Bridts C.H., Ebo D.G. The basophil activation test in immediate-type drug allergy. Immunol. Allergy Clin. North Am., 2009, Vol. 29, no. 3, pp. 555-566.

38. He S.H., Zhang H.Y., Zeng X.N., Chen D., Yang P.C. Mast cells and basophils are essential for allergies: mechanisms of allergic inflammation and a proposed procedure for diagnosis. Acta Pharmacol. Sin., 2013, Vol. 34, no. 10, pp. 1270-1283.

39. Heine R.G. Gastrointestinal food allergies. Chem. Immunol. Allergy, 2015, Vol. 101, pp. 171-180.

40. Hemmings O., Kwok M., McKendry R., Santos A.F. Basophil activation test: old and new applications in allergy. Curr. Allergy Asthma Rep., 2018, Vol. 18, no. 12, 77. doi: 10.1007/s11882-018-0831-5.

41. Hoffmann H.J., Knol E.F., Ferrer M., Mayorga L., Sabato V., Santos A.F., Eberlein B., Nopp A., MacGlashan D. Pros and cons of clinical basophil testing (BAT). Curr. Allergy Asthma Rep., 2016, Vol. 16, no. 8, 56. doi: 10.1007/s11882-016-0633-6.

42. Hoffmann H.J., Santos A.F., Mayorga C., Nopp A., Eberlein B., Ferrer M., Rouzaire P, Ebo D.G., Sabato V, Sanz M.L., Pecaric-Petkovic T., Patil S.U., Hausmann O.V., Shreffler W.G., Korosec P, Knol E.F. The clinical utility of basophil activation testing in diagnosis and monitoring of allergic disease. Allergy, 2015, Vol. 70, no. 11, pp. 13931405.

43. Karasuyama H., Tsujimura Y., Obata K., Mukai K. Role for basophils in systemic anaphylaxis. Chem. Immunol. Allergy, 2010, Vol. 95, pp. 85-97.

44. Kim Z., Choi B.S., Kim J.K., Won D.I. Basophil markers for identification and activation in the indirect basophil activation test by flow cytometry for diagnosis of autoimmune urticaria. Ann. Lab. Med., 2016, Vol. 36, no. 1, pp. 28-35.

45. Knol E.F., Gibbs B.F. Basophil stimulation and signaling pathways. Methods Mol. Biol., 2014, Vol. 1192, pp. 193-203.

46. Komata T., Sbderstram L., Borres M.P., Tachimoto H., Ebisawa M. Usefulness of wheat and soybean specific IgE antibody titers for the diagnosis of food allergy. Allergol. Int., 2009, Vol. 58, no. 4, pp. 599-603.

47. Korosec P, Silar M., Erzen R., Celesnik N., Bajrovic N., Zidarn M., Kosnik M. Clinical routine utility of basophil activation testing for diagnosis of hymenoptera-allergic patients with emphasis on individuals with negative venom-specific IgE antibodies. Int. Arch. Allergy Immunol., 2013, Vol. 161, no. 4, pp. 363-368.

48. Kosnik M., Silar M., Bajrovic N., Music E., Korosec P High sensitivity of basophils predicts side-effects in venom immunotherapy. Allergy, 2005, Vol. 60, no. 11, pp. 1401-1406.

49. Mayorga C., Sanz M.L., Gamboa PM., Garcia B.E., Caballero M.T., Garcia J.M., Labrador M., Lahoz C., Longo Areso N., Lopez Hoyos M., Martinez Quesada J., Monteseirin F.J.; Immunology Committee of the Spanish Society of Allergology and Clinical Immunology of the SEAIC. In vitro diagnosis of immediate allergic reactions to drugs: an update. J. Investig. Allergol. Clin. Immunol., 2010, Vol. 20, no. 2, pp. 103-109.

50. Mikkelsen S., Bibby B.M., Dolberg M.K., Dahl R., Hoffmann H.J. Basophil sensitivity through CD63 or CD203c is a functional measure for specific immunotherapy. Clin. Mol. Allergy, 2010, Vol. 8, no. 1,2. doi: 10.1186/1476-7961-8-2.

51. Muller N., Fachruddin T., Hausmann O. Laborabklarung der Medikamentenallergie: Grenzen und Mbglichkeiten. Ther Umsch, 2019, Vol. 75, no. 1, pp. 33-37.

52. Nakanishi K. Basophils as APC in Th2 response in allergic inflammation and parasite infection. Curr. Opin. Immunol., 2010, Vol. 22, no. 6, pp. 814-820.

53. Nakashima C., Otsuka A., Kabashima K. Recent advancement in the mechanism of basophil activation. J. Dermatol. Sci., 2018, Vol. 91, no. 1, pp. 3-8.

54. Nopp A., Johansson S.G., Ankerst J., Bylin G., Cardell L.O., Grbnneberg R, Irander K, Palmqvist M, Oman H. Basophil allergen threshold sensitivity: a useful approach to anti-IgE treatment efficacy evaluation. Allergy, 2006, Vol. 61, no. 3, pp. 298-302.

55. Novak N., Mete N., Bussmann C., Maintz L., Bieber T., Akdis M., Zumkehr J., Jutel M., Akdis C. Early suppression of basophil activation during allergen-specific immunotherapy by histamine receptor 2. J. Allergy Clin. Immunol., 2012, Vol. 130, no. 5, pp. 1153-1158.e2.

56. Ocmant A., Mulier S., Hanssens L., Goldman M., Casimir G., Mascart F., Schandene L. Basophil activation tests for the diagnosis of food allergy in children. Clin. Exp. Allergy, 2009, Vol. 39, no. 8, pp. 1234-1245.

57. Ocmant A., Peignois Y., Mulier S., Hanssens L., Michils A., Schandene L. Flow cytometry for basophil activation markers: the measurement of CD203c up-regulation is as reliable as CD63 expression in the diagnosis of cat allergy. J. Immunol. Methods, 2007, Vol. 320, no. 1-2, pp. 40-48.

58. Ogulur I., Kiykim A., Baris S., Ozen A., Yuce E.G., Karakoc-Aydiner E. Basophil activation test for inhalant allergens in pediatric patients with allergic rhinitis. Int. J. Pediatr. Otorhinolaryngol., 2017, Vol. 97, pp. 197-201.

59. Ozdemir S.K., Guloglu D., Sin B.A., Elhan A.H., Ikinciogullari A., Misirligil Z. Reliability of basophil activation test using CD203c expression in diagnosis of pollen allergy. Am. J. Rhinol. Allergy, 2011, Vol. 25, no. 6, pp. e225-e231.

60. Patil S.U., Shreffler W.G. Immunology in the Clinic Review Series; focus on allergies: basophils as biomarkers for assessing immune modulation. Clin. Exp. Immunol., 2012, Vol. 167, no. 1, pp. 59-66.

61. Peternelj A., Silar M., Erzen R., Kosnik M., Korosec P. Basophil sensitivity in patients not responding to venom immunotherapy. Int. Arch. Allergy Immunol., 2008, Vol. 146, no. 3, pp. 248-254.

62. Posa D., Hofmaier S., Arasi S., Matricardi P.M. Natural evolution of IgE responses to mite allergens and relationship to progression of allergic disease: a review. Curr. Allergy Asthma Rep., 2017, Vol. 17, no. 5, 28. doi: 10.1007/s11882-017-0697-y.

63. Potapinska O., Gorska E., Zawadzka-Krajewska A., Kulus M., Wasik M., Demkow U. The usefulness of CD203c expression measurement on basophils after activation with grass pollen and Dermatophagoides pteronyssinus antigens. Preliminary study. Pneumonol. Alergol. Pol., 2009, Vol. 77, no. 2, pp. 138-144. [In Polish]

64. Puan K.J., Andiappan A.K., Lee B., Kumar D., Lai T.S., Yeo G., Bercin D., Starke M., Haase D., Lum J., Chew F.T., Connolly J., Wong S.C., Zolezzi F., Poidinger M., Wang Y., Rbtzschke O. Systematic characterization of basophil anergy. Allergy, 2017, Vol. 72, no. 3, pp. 373-384.

65. Roberts G., Lack G. Diagnosing peanut allergy with skin prick and specific IgE testing. J. Allergy Clin. Immunol., 2005, Vol. 115, no. 6, pp. 1291-1296.

66. Rubio A., Vivinus-Nebot M., Bourrier T., Saggio B., Albertini M., Bernard A. Benefit of the basophil activation test in deciding when to reintroduce cow’s milk in allergic children. Allergy, 2011, Vol. 66, no. 1, pp. 92-100.

67. Santos A.F., Douiri A., Becares N., Wu S.Y., Stephens A., Radulovic S., Chan S.M., Fox A.T., Du Toit G., Turcanu V., Lack G. Basophil activation test discriminates between allergy and tolerance in peanut-sensitized children. J. Allergy Clin. Immunol., 2014, Vol. 134, no. 3, pp. 645-652.

68. Sanz M.L., Gamboa P.M., De Weck A.L. Cellular tests in the diagnosis of drug hypersensitivity. Curr. Pharm. Des., 2008, Vol. 14, no. 27, pp. 2803-2808.

69. Schiener M., Eberlein B., Moreno-Aguilar C., Pietsch G., Serrano P., McIntyre M., Schwarze L., Russkamp D., Biedermann T., Spillner E., Darsow U., Ollert M., Schmidt-Weber C.B., Blank S. Application of recombinant antigen 5 allergens from seven allergy-relevant Hymenoptera species in diagnostics. Allergy, 2017, Vol. 72, no. 1, pp. 98-108.

70. Schneider E., Thieblemont N., De Moraes M.L., Dy M. Basophils: new players in the cytokine network. Eur. Cytokine Netw., 2010, Vol. 21, no. 3, pp. 142-153.

71. Schwager C., Kull S., Behrends J., Rbckendorf N., Schocker F., Frey A., Homann A., Becker W.M., Jappe U. Peanut oleosins associated with severe peanut allergy-importance of lipophilic allergens for comprehensive allergy diagnostics. J. Allergy Clin. Immunol., 2017, Vol. 140, no. 5, pp. 1331-1338.e8.

72. Schwartz C., Eberle J.U., Voehringer D. Basophils in inflammation. Eur. J. Pharmacol., 2016, Vol. 778, pp. 90-95.

73. Siracusa M.C., Kim B.S., Spergel J.M., Artis D. Basophils and allergic inflammation. J. Allergy Clin. Immunol., 2013, Vol. 132, no. 4, pp. 789-801; quiz 788.

74. Shan M., Carrillo J., Yeste A., Gutzeit C., Segura-Garzon D., Walland A.C., Pybus M., Grasset E.K., Yeiser J.R., Matthews D.B., van de Veen W., Comerma L., He B., Boonpiyathad T., Lee H., Blanco J., Osborne L.C., Siracusa M.C., Akdis M., Artis D., Mehandru S., Sampson H.A., Berin M.C., Chen K., Cerutti A. Secreted IgD amplifies humoral T Helper 2 Cell responses by Binding Basophils via Galectin-9 and CD44. Immunity, 2018, Vol. 49, no. 4, pp. 709-724.e8.

75. Soares-Weiser K., Takwoingi Y., Panesar S.S., Muraro A., Werfel T., Hoffmann-Sommergruber K., Roberts G., Halken S., Poulsen L., van Ree R., Vlieg-Boerstra B.J., Sheikh A.; EAACI Food Allergy and Anaphylaxis Guidelines Group. The diagnosis of food allergy: a systematic review and meta-analysis. Allergy, 2014, Vol. 69, no. 1, pp. 76-86.

76. Steiner M., Huber S., Harrer A., Himly M. The evolution of human basophil biology from neglect towards understanding of their immune functions. Biomed. Res. Int., 2016, Vol. 2016, 8232830. doi: 10.1155/2016/8232830.

77. Sticco K.L., Pandya N.K., Lynch D.T. Basophilia. [Updated 2020 Sep 5]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2020 Jan.

78. Sturm G.J., B5hm E., Trummer M., Weiglhofer I., Heinemann A., Aberer W. The CD63 basophil activation test in Hymenoptera venom allergy: a prospective study. Allergy, 2004, Vol. 59, no. 10, pp. 1110-1117.

79. Sturm G.J., Jin C., Kranzelbinder B., Hemmer W., Sturm E.M., Griesbacher A., Heinemann A., Vollmann J., Altmann F., Crailsheim K., Focke M., Aberer W. Inconsistent results of diagnostic tools hamper the differentiation between bee and vespid venom allergy. PLoS ONE, 2011, Vol. 6, no. 6, e20842. doi: 10.1371/journal.pone.0020842.

80. Sturm G.J., Kranzelbinder B., Sturm E.M., Heinemann A., Groselj-Strele A., Aberer W. The basophil activation test in the diagnosis of allergy: technical issues and critical factors. Allergy, 2009, Vol. 64, no. 9, pp. 1319-1326.

81. Tokuda R., Nagao M., Hiraguchi Y., Hosoki K., Matsuda T., Kouno K., Morita E., Fujisawa T. Antigen-induced expression of CD203c on basophils predicts IgE-mediated wheat allergy. Allergol. Int., 2009, Vol. 58, no. 2, pp. 193-199.

82. Tsai M., Mukai K., Chinthrajah R.S., Nadeau K.C., Galli S.J. Sustained successful peanut oral immunotherapy associated with low basophil activation and peanut-specific IgE. J. Allergy Clin. Immunol., 2020, Vol. 145, no. 3, pp. 885-896.e6.

83. Voehringer D. The role ofbasophils in helminth infection. Trends Parasitol., 2009, Vol. 25, no. 12, pp. 551-556.

84. Wolanczyk-Medrala A., Barg W., Gogolewski G., Panaszek B., Liebhart J., Litwa M., Medrala W. Influence of hyperosmotic conditions on basophil CD203c upregulation in patients with food-dependent exercise-induced anaphylaxis. Ann. Agric. Environ. Med., 2009, Vol. 16, no. 2, pp. 301-304.

85. Yamaga S., Yanase Y., Ishii K., Ohshimo S., Shime N., Hide M. Decreased intracellular histamine concentration and basophil activation in anaphylaxis. Allergol. Int., 2020, Vol. 69, no. 1, pp. 78-83.

86. Zidarn M., Kosnik M., Silar M., Bajrovic N., Korosec P. Sustained effect of grass pollen subcutaneous immunotherapy on suppression of allergen-specific basophil response; a real-life, nonrandomized controlled study. Allergy, 2015, Vol. 70, no. 5, pp. 547-555.