Preview

Медицинская иммунология

Расширенный поиск

Микроокружение опухоли: формирование иммунного профиля

https://doi.org/10.15789/1563-0625-TMT-1909

Полный текст:

Аннотация

Микроокружение опухоли (Tumor Microenvironment — ТМЕ) формируется в результате взаимодействия и образования перекрестных связей между опухолевой клеткой и разными типами окружающих клеток. Исследования последних лет показали, что опухоль так перепрограммирует микроокружение, что ТМЕ способствует развитию первичных опухолей, их метастазированию и становится важным регулятором онкогенеза. Под влиянием опухоли значительным изменениям, «редактированию», подвергается иммунный профиль в ТМЕ. Образуется иммунодепрессивная сеть, которая подавляет активность главного эффектора клеточного иммунитета — Т-лимфоцитов. Т-клетки в ТМЕ находятся в состоянии анергии и истощения и характеризуются повышенной экспрессией ингибирующих рецепторов, снижением секреции цитокинов и цитолитической активности. Блокирование ингибиторных рецепторов специфическими антителами может привести к восстановлению функций истощенных Т-клеток. Поэтому восстановление функциональной активности Т-лимфоцитов представляет одну из важных стратегий в иммунотерапии рака. На формирование иммунного профиля влияют накапливающиеся в опухоли генетические аберрации, которые играют важную роль в создании специфического, характерного только для данной опухоли иммунного окружения в ТМЕ. Генетические изменения опухолевых клеток приводят к фенотипическим и функциональным перестройкам лимфоцитов, что позволяет опухоли избегать реакции иммунных клеток. Поскольку многие опухоли возникают после длительного воспаления или проявляют характеристики хронического воспаления по мере прогрессирования, воспаление считается важным фактором формирования ТМЕ, оказывающим влияние на иммунный профиль. Иммунные инфильтраты из разных опухолей человека, ассоциированных с воспалением, могут содержать ценную прогностическую и патофизиологическую информацию. Так, макрофаги в ТМЕ уже стали рассматриваться как информативный маркер и как терапевтическая мишень. Одним из основных механизмов, с помощью которого опухолевые клетки перепрограммируют окружающие клетки, является выделение экзосом — мелких везикул, которые переносят и доставляют белки и нуклеиновые кислоты к другим клеткам. При поглощении экзосом-ного груза в реципиентной клетке происходят молекулярные, транскрипционные и трансляционные изменения, которые оказывают влияние на функции неопухолевых клеток в ТМЕ. Поэтому опухолевые экзосомы представляют собой эффективное средство, с помощью которого опухоль может изменять реактивность иммунных клеток в ТМЕ. Таким образом, наряду с индивидуальным молекулярным и геномным тестированием опухоли, следует обратить внимание на более глубокий анализ иммунного профиля ТМЕ, который представляет собой большой ресурс биомаркеров и мишеней для иммунотерапии.

Об авторах

Е. К. Олейник
ФГБУН Институт биологии, Карельский научный центр, Российская академия наук
Россия

Олейник Евгения Константиновна - доктор биологических наук, доцент, главный научный сотрудник, руководитель группы иммунологии.

185910, Республика Карелия, Петрозаводск, ул. Пушкинская, 11, Тел.: 8 (8142) 76-98-10, Тел./факс: 8 (8142) 76-98-10



М. И. Шибаев
ГБУЗ Республиканский онкологический диспансер
Россия

Шибаев Михаил Игоревич — кандидат медицинских наук, хирург-онколог.

Петрозаводск, Республика Карелия



К. С. Игнатьев
ГБУЗ Республиканский онкологический диспансер
Россия

Игнатьев Кирилл Сергеевич — хирург-онколог.

Петрозаводск, Республика Карелия



В. М. Олейник
ФГБУН Институт биологии, Карельский научный центр, Российская академия наук
Россия

Олейник Виктор Михайлович — доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник.

Петрозаводск, Республика Карелия



Г. А. Жулай
ФГБУН Институт биологии, Карельский научный центр, Российская академия наук
Россия

Жулай Галина Анатольевна — младший научный сотрудник.

Петрозаводск, Республика Карелия



Список литературы

1. Afshar-Kharghan V The role of the complement system in cancer. J. Clin. Invest., 2017, Vol. 127, no. 3, pp. 780-789.

2. Airold I., Bertaina A., Prigione I., Zorzoli A., Pagliara D., Cocco C., Meazza R., Loiacono F., Lucarelli B., Bernardo M.E,, Barbarito G., Pende D., Moretta A., Pistoia V, Moretta L., Locatelli F. y5 T cell reconstitution after HLA-haploidentical hematopoietic transplantation depleted of TCR-aP+/CD19+ lymphocytes. Blood, 2015, Vol. 125, no. 15, pp. 2349-2358.

3. Altorki N.K., Markowitz G.J., Gao D., Port J.L., Saxena A., Stiles B., McGraw T., Mittal V The lung icroenvironment: an important regulator of tumour growth and metastasis. Nat. Rev. Cancer, 2019, Vol. 19, no. 1, pp. 9-31.

4. Amarnath S, Foley J.E., Farthing D.E., Gress R.E., Laurence A, Eckhaus M.A., Metais J.Y., Rose J.J., Hakim F.T., Felizardo T.C., Cheng A.V., Robey P.G., Stroncek D.E., Sabatino M., Battiwalla M., Ito S., Fowler D.H., Barrett A.J. Bone marrow-derived mesenchymal stromal cells harness purinergenic signaling to tolerize human Th1 cells in vivo. Stem Cells, 2015, Vol. 33, no. 4, pp. 1200-1212.

5. Amsen D., Klaas P.J.M., van Gisbergen P.H., Rene A.W, van Lier A. Tissue-resident memory T cells at the center of immunity to solid tumors. Nat. Immunol., 2018, Vol. 19, no. 6, pp. 538-546.

6. Andrews L.P. , Yano H., Dario A.A. Vignali D.A A. Inhibitory receptors and ligands beyond PD-1, PD-L1 and CTLA-4: breakthroughs or backups. Nat. Immunol., 2019, Vol. 20, no. 11, pp. 1425-1434.

7. Balli D., RechA.J., Stanger, B.Z., Vonderheide R.H. Immune cytolytic activity stratifies molecular subsets of human pancreatic cancer. Clin. Cancer Res., 2017, Vol. 23, no. 12, pp. 3129-3138.

8. Becht E., Giraldo N.A., Dieu-Nosjean M.C., Sautes-Fridman C., Fridman W.H. Cancer immune contexture and immunotherapy. Curr. Opin. Immunol., 2016, Vol. 39, pp. 7-13.

9. Becht E., de Reynies A., Giraldo N.A., Pilati C., Buttard B., Lacroix L., Selves J., Saute's-Fridman C., Laurent-Puig P., Fridman WH. Immune and stromal classification of colorectal cancer is associated with molecular subtypes and relevant for precision immunotherapy. Clin. Cancer Res., 2016, Vol. 22, pp. 4057-4066.

10. Bertucci F., Finetti P., Colpaert C., Mamessier E., Parizel M., Dirix L., Viens P., Birnbaum D., van Laere S. PDL1 expression in inflammatory breast cancer is frequent and predicts for the pathological response to chemotherapy. Oncotarget, 2015, Vol. 6, no. 15, pp. 13506-13519.

11. Bottazzia B., Riboli E., Mantovani A. Aging, inflammation and cancer. Sem. Immunol., 2018, Vol. 40, pp. 74-82.

12. Boyiadzis M., Whiteside T.L. The emerging roles of tumor-derived exosomes in hematological malignancies. Leukemia, 2017, Vol. 6, pp. 1259-1268.

13. Burrello J., Monticone S., Gai C., Gomez Y., Kholia S., Camussi G. Stem cell-derived extracellular vesicles and immune-modulation. Front. Cell Dev. Biol., 2016, Vol. 4, 83. doi: 10.3389/fcell.2016.00083.

14. Cha Y.J., Kim H.R., Lee C.Y., Cho B.C., Shim H.S. Clinicopathological and prognostic significance of programmed cell death ligand-1 expression in lung adenocarcinoma and its relationship with p53 status. Lung Cancer, 2016, Vol. 97, pp. 73-80.

15. Chang C.H., Curtis J.D., Maggi L.B., Faubert B., Villarino A.V., O’Sullivan D.O., Huang S.C., van der Windt G.J., Blagih J., Qiu J., Weber J.D., Pearce E.J., Jones R.G., Pearce E.L. Posttranscriptional control of T cell effector function by aerobic glycolysis. Cell, 2013, Vol. 153, no. 6, pp. 1239-1251.

16. Chang C.H., Qiu J., O’Sullivan D., Buck M.D., Noguchi T., Curtis J.D., Chen Q. Metabolic competition in the tumor microenvironment is a driver of cancer progression. Cell, 2015, Vol. 162, no. 6, pp. 1229-1241.

17. Charoentong P., Finotello F., Angelov M., Mayer C., Efremova M., Rieder D., Hackl H., Trajanoski Z. Pancancer immunogenomic analyses. Reveal genotype-immunophenotype relationshipsand predictors of response to checkpoint blockade. Cell Rep., 2017, Vol. 18, no. 1, pp. 248-262.

18. Chen W, Huang Y., Han J., Yu L., Li Y., Lu Z., Li H., Liu Z., Shi C., Duan F., Xiao Y. Immunomodulatory effects of mesenchymal stromal cells-derived exosome. Immunol. Res., 2016, Vol. 64, no. 4, pp. 831-840.

19. Chen D.S., Mellman I. Elements of cancer immunity and the cancer-immune set point. Nature, 2017, Vol. 541, no. 7637, pp. 321-330.

20. Dadi S., Li M. O. Tissue-resident lymphocytes: sentinel of the transformed tissue. J. Immunother. Cancer, 2017, Vol. 5, 41. doi: 10.1186/s-017-0244-3.

21. di Trapani M., Bassi G., Midolo M., Gatti A., Kamga P.T., Cassaro A., Carusone R., Adamo A., Krampera M. Differential and transferable modulatory effects of mesenchymal stromal cell-derived extracellular vesicles on T, B and NK cell functions. Sci. Rep., 2016, Vol. 6, 24120. doi: 10.1038/srep24120.

22. Djenidi F.J., Goubar A., Durgeau A., Meurice G., de MontprevilleV., Validire P., Besse B., Mami-Chouaib M. CD8+CD103+ tumor-infiltrating lymphocytes are tumor-specific tissue-resident memory T cells and a prognostic factor for survival in lung cancer patients. J. Immunol., 2015, Vol. 194, no. 7, pp. 3475-3486.

23. Dostert G., Mesure B., Menu P., Velot E. How do mesenchymal stem cells influence or are influenced by microenvironment through extracellular vesicles communication? Front. Cell Dev. Biol., 2017, Vol. 5, 6. doi: 10.3389/fcell.2017.00006.

24. Galdiero M.R., Varricchi G., Loffredo S., Mantovani A., Marone G. Roles of neutrophils in cancer growth and progression. J. Leukoc. Biol., 2018, Vol. 103, no. 3, pp. 457-464.

25. Ganesan A.P., Clarke J., Wood G., Garrida-Martes E.M., Che S.J., Mellows T. Tissue-resident memory features are linked to the magnitude of cytotoxic T cell responses in human lung cancer. Nat. Immunol., 2017, Vol. 18, no. 8, pp. 940-950.

26. Gentles A.J., Newman A.M., Liu C.L., Bratman S.V., Feng W., Kim D., Nair V S., Xu Y., Khuong A., Hoang C.D. The prognostic landscape of genes and infiltrating immune cells across human cancers. Nat. Med., 2015, Vol. 21, no. 8, pp. 938-945.

27. Germenis A.E., Karanikas V Immunoepigenetics: the unseen side of cancer immunoediting. Immunol. Cell Biol., 2007, Vol. 85, no. 1, pp. 55-59.

28. Gholami M.D., Alikardar G., Saeedi Y., Heydari S., Garssen J., Falak R. Exhaustion of T lymphocytes in the tumor microenvironment: significance and effective mechanisms. Cell. Immunol., 2017, Vol. 322, pp. 1-14.

29. Goswami K.K., Ghosh T., Ghosh S., Sarkar M., Bose A., Baral R. Tumor promoting role of anti-tumor macrophages in tumor microenvironment. Cell. Immunol., 2017, Vol. 316, no. 6, pp. 1-10.

30. Hensley C.T, Wasti A.T., de Berardinis R.J. Gutamine and cancer: cell biology, physiology, and clinical opportunities. J. Clin. Invest., 2013, Vol. 123, no. 9, pp. 3678-3684.

31. Hombrink P., Helbig C., Backer R.A., Piet B., Oja A.E., Stark R., Brasser G., Jongejan A., Jonkers R.E., Nota B., Basak O., Clevers H.C., Moerland P.D., Amsen D., van Lier R.A. Programs for the persistence, vigilance and control of human CD8+ lung-resident memory T cells. Nat. Immun., 2016, Vol. 17, no. 12, pp. 1467-1478.

32. Jhaveri K., Teplinsky E., Silvera D., Valeta-Magara A., Arju R., Giashudin Sh., Sarfraz Y. Hyperactivated mTOR and JAK2/STAT3 pathways: molecular drivers and potential therapeutic targets of inflammatory and invasive ductal breast cancers after neoadjuvant chemotherapy. Clin. Breast Cancer, 2016, Vol. 16, no. 2, pp. 113-122.

33. Jiang D., Gao Z., Cai Z., Wang M., He J. Clinicopathological and prognostic significance of FOXP3+ tumor infiltrating lymphocytes in patients with breast cancer: a meta-analysis. BMC Cancer, 2015, Vol. 15, 727. doi: 10.1186/s12885-015-1742-7.

34. Jiang Y., Li Y., Zhu B. T-cell exhaustion in the tumor microenvironment. Cell Death Dis., 2015, Vol. 6, e1792. doi: 10.1038/cddis.2015.162.

35. Komdeur F.L., Prins T.M., van de Wall S., Plat A., Wisman G.B.A., Hollema H., Daemen T., Church D.N., de Bruyn M., Nijman H.W. CD 103+ tumor-infiltrating lymphocytes are tumorreactive intraepithelial CD8+ T cells ciated with prognostic benefit and therapy response in cervical cancer. OncoImmunology, 2017, Vol. 6, no. 9, e1338230. doi.org/10.1080/2162402X.2017.1338230.

36. Kumar B., Garcia M., Murakami J.L., Chen C.C. Exosome-mediated microenvironment dysregulation in leukemia. Biochim. Biophys. Acta, 2016, Vol. 1863, no. 3, pp. 464-470.

37. Kumar B. V, Ma W., Miron M., Granot T., Guyer R., Carpenter D., Senda T., Sun X. Human tissue-resident memory T cells are defined by core transcriptional and functional signatures in lymphoid and mucosal sites. Cell Rep., 2017, Vol. 12, pp. 2921-2934.

38. Lasry A., Zingler A., Ben-Neriah Y. Inflammatory networks underlines colorectal cancer. Nat. Immunol., 2016, Vol. 17, no. 3, pp. 230-240.

39. Layer J.P., Kronmuller M.T., Quast T., van den Boorn-Konijnenberg D., Effern M., Hinze D., Althoff K., Schramm A., Westerman F., Peifer M. Amplification of N-Myc is associated with a T-cell-poor microenvironment in metastatic neuroblastoma restraining interferon pathway activity and chemokine expression. OncoImmunology, 2017, Vol. 6, no. 6, e1320626. doi: 10.1080/2162402X.2017.1320626.

40. Le D.T., Uram J.N., Wang H., Bartlett B.R., Kemberling H., Eyring A.D.,Skora A.D., Luber B.S., Azad N.S., Laheru D. PD-1 blockade in tumors with mismatch-repair deficiency. N. Engl. J. Med., 2015, Vol. 372, no. 26, pp. 2509-2520.

41. Lim B., Wendy A.W., Xiaoping W., James M.R., Naoto T.U. Inflammatory breast cancer biology: the tumour microenvironment is key. Nat. Rev. Cancer, 2018, Vol. 18, no. 8, pp. 485-499.

42. Lim W.A., June C.H. The principles of engineering immune cells to treat cancer. Cell, 2017, Vol. 168, no. 4, pp. 724-740.

43. Linnemann C., van Buuren M.M., Bies L., Verdegaal E.M., Schotte R., Calis J.J., Behjati S., Velds A., Hilkmann H., Atmioui D.E. Highthroughput epitope discovery reveals frequent recognition of neo-antigens by CD4+ T cells in human melanoma. Nat. Med., 2015, Vol. 21, no. 1, pp. 81-85.

44. Ludwig S., Floros T., Theodoraki M.N., Hong C.S., Jackson EK., Lang S., Whiteside T.L. Suppression of lymphocyte functions by plasma exosomes correlates with disease activity in patients with head and neck cancer. Clin. Cancer Res., 2017, Vol. 23, no. 16, pp. 4843-4854.

45. Mantovani A.F., Marchesi A., Malesci L., Laghi P.A. Tumour-associated macrophages as treatment targets in oncology. Nat. Rev. Clin. Oncol., 2017, Vol. 14, no. 7, pp. 399-416.

46. Mego M., Gao H., Cohen E.N., Anfossi S., Giordano A., Tin S., Fouat T.M. Circulating tumor cells (CTCs) are associated with abnormalities in peripheral blood dendritic cells in patients with inflammatory breast cancer. Oncotarget, 2016, Vol. 8, no. 22, pp. 35656-35658.

47. Murray T., Marraco S.A.F., Baumgaertner P., Bordry N., Cagnon L., Donda A., Romero P., Verdeil G., Speiser D.E. Very late antigen-1 marks functional tumor-resident CD8 T cells and correlates with survival of melanoma patients. Front. Immunol., 2016, Vol. 7, e573. doi: 10.3389/fimmu.2016.00573.

48. Neviani P., Fabbri M. Exosomic microRNAs in the tumor microenvironment. Front. Med. (Lausanne), 2015, Vol. 2, e47. doi: 10.3389/fmed.2015.00047.

49. Nizard M., Roussel H., Diniz M.O., Karaki S., Tran T., Voron T., Dransart E., Sandoval F., Riquet M., Rance B., Marcheteau E., Fabre E., Mandavit M., Terme M., Blanc C., Escudie J.B., Gibault L., Barthes F.L.P., Granier C., Ferreira L.C.S., Badoual C., Johannes L., Tartour E. Induction of resident memory T cells enhances the efficacy of cancer vaccine. Nat. Commun., 2017, Vol. 8, e15221. doi: 10.1038/ncomms15221.

50. Ock C.Y., Hwang J.E., Keam B., Kim S.B., Shim J.J., Jang H.J., Park S., Sohn B.H., Cha M., Ajani J.A. Genomic landscape associated with potential response to anti-CTLA-4 treatment in cancers. Nat. Commun., 2017, Vol. 8, no. 1, e1050. doi: 10.1038/s41467-017-01018-0.

51. Ohue Y., Nishikawa H. Regulatory T (Treg) cells in cancer: Can Treg cells be a new therapeutic target? Cancer Sci., 2019, Vol. 110, pp. 2080-2089.

52. O’Toole A., Michielsen A.J., Nolan B., Tosetto M., Sheahan E., Mulcahy H.E., Winter D.C., Hyland J.M.,, O’Connell P.R., Fennelly D., O’Donoghue D.O., O’Sullivan J., Doherty G.A., Ryan E.J. Tumour icroenvironment of both early- and late-stage colorectal cancer is equally immunosuppressive. Br. J. Cancer, 2014, Vol. 111, pp. 927-932.

53. Parker B.S., Rautela J., Hertzog PJ. Antitumour actions of interferons: implications for cancer therapy. Nat. Rev. Cancer, 2016, Vol. 16, no. 3, pp. 131-144.

54. Pauken E., Wherry E.J. Overcoming T cell exhaustion in infection and cancer. Trends Immunol., 2015, Vol. 38, no. 4, pp. 265-276.

55. Qin F.X. Dynamic behavior and function of FOXP3+ regulatory T cells in tumor bearing host. Cell. Mol. Immunol., 2009, Vol. 6, no. 1, pp. 3-13.

56. Quigley D., Silwal-Pandit L., Dannenfelser R., Langerod A., Vollan H.K., Vaske C., Siegel J.U., Troyanskaya O., Chin S.F., Caldas C. Lymphocyte Invasion in IC10/basal-like breast tumors is associated with wild-type TP53. Mol. Cancer Res., 2015, Vol. 13, no. 3, pp. 493-501.

57. Reiser J., Banerjee A. Effector, memory, and dysfunctional CD8(+) T cell fates in the antitumor immune response. J. Immunol., 2016, no. 2016, 8941260. doi: 10.1155/2016/8941260.

58. Ribas A., Wolchok J.D. Cancer immunotherapy using checkpoint blockade. Science, 2018, Vol. 359, no. 6382, pp. 1350-1355.

59. Ridge S.M., Sullivan F.J., Glynn S.A. Mesenchymal stem cells: key players in cancer progression. Mol. Cancer., 2017, Vol. 16, no. 1, 31. doi: 10.1186/s12943-017-0597-8.

60. Rizvi N.A., Hellmann M.D., Snyder A., Kvistborg P., Makarov V, Havel J.J., Lee W., Yuan J., Wong P., Ho T.S. Cancer immunology. Mutational landscape determines sensitivity to PD-1 blockade in non-small cell lung cancer. Science, 2015, Vol. 348, no. 6230, pp. 124-128.

61. Robinson D.R., Wu Y.M., Lonigro R.J., Vats P., Cobain E., Everett J., Cao X., Rabban E., Kumar-Sinha C., Raymond V. Integrative clinical genomics of metastatic cancer. Nature, 2017, Vol. 548, no. 7667, pp. 297-303.

62. Rooney M.S., Shukla S.A., Wu C.J., Getz G., Hacohen N. Molecular and genetic properties of tumors associated with local immune cytolytic activity. Cell, 2015, Vol. 160, no. 1-2, pp. 48-61.

63. Salmon H., Remark R., Gnjatic S., Merad M. Host tissue determinants of tumour immunity. Nat. Rev. Cancer, 2019, Vol. 19, no. 4, pp. 215-227.

64. Savas P., Salgado R., Denkert C., Sotiriou C., Darcy P.K., Smyth M.J., Loi S. Clinical relevance of host immunity in breast cancer: from TILs to the clinic. Nat. Rev. Clin. Oncol., 2016, Vol. 13, pp. 228-241.

65. Schumacher T.N., Schreiber R.D. Neoantigens in cancer immunotherapy. Science, 2015, Vol. 348, no. 6230, pp. 69-74.

66. Silva-Santos B., Serre K., Norell H. yS T cells in cancer. Nat. Rev. Immunol., 2015, Vol. 15, no. 11, pp. 683-691.

67. Silva-Santos B., Mensurado S., Coffelt S. yS T cells: pleiotropic immune effectors with therapeutic potential in cancer. Nat.Rev. Cancer, 2019, Vol. 19, no. 7, pp. 392-404.

68. Stanton S.E., Adams S., Disis M.L. Variation in the incidence and magnitude of tumor-infiltrating lymphocytes in breast cancer subtypes: a systematic review. JAMA Oncol., 2016, Vol. 2, no. 10, pp. 1354-1360.

69. Su Sh., Liu Q., Chen J., Chen J., Xiao F., He Ch., Huang D., Wu W, Lin L., Huang W, Cui X. A positive feedback loop between mesenchymal-like cancer cells and macrophages is essential to breast cancer metastasis. Cancer Cell, 2014, Vol. 25, pp. 605-620.

70. Tanaka A., Sakaguchi Sh. Regulatory T cells in cancer immunotherapy. Cell Res., 2017, Vol. 27, no. 1, pp. 109-118.

71. Tanaka A., Sakaguchi Sh. Targeting Treg cells in cancer immunotherapy. Eur. J. Immunol., 2019, Vol. 49, pp. 1140-1146.

72. van Allen E.M., Miao D., Schilling B., Shukla S.A., Blank C., Zimmer L., Sucker A., Hillen U., Foppen M.H.G., Goldinger S.M. Genomic correlates of response to CTLA-4 blockade in metastatic melanoma. Science, 2015, Vol. 350, no. 6257, pp. 207-211.

73. Vermijlen D., Gatti D., Kouzeli A., Rus T., Eberl M. yS T cell responses: how many ligands will it take till we know? Semin. Cell Dev. Biol., 2018, Vol. 84, pp. 75-86.

74. Wang B., Wu S., Zeng H., Liu Z., Dong W, He W, Chen X., Dong X., Zheng L., Lin T., Huang J. CD103+ tumor infiltrating lymphocytes predict a favorable prognosis in urothelial cell carcinoma of the bladder. J. Urol., 2015, Vol. 194, no. 2, pp. 556-562.

75. Wang W, Kryczek I., Dostal L., Lin H., Tan L., Zhao L., Lu F., Wei S., Maj T., Peng D., He G., Vatan L., Szeliga W, Kuick R., Kotarski J., Tarkowski R., Dou Y., Rattan R., Munkarah A., Liu J.R., Zou W. Effector T cells abrogate stroma-mediated chemoresistance in ovarian cancer. Cell, 2016, Vol. 165, no. 5, pp. 1092-1105.

76. Wang Z.Q., Milne K., Derocher H., Webb J.R., Nelson B.H., Watson PH. CD103 and intratumoral immune response in breast cancer. Clin. Cancer Res., 2016, Vol. 22, no. 24, pp. 6290-6297.

77. Wang Q., Hu B., Hu X., Kim H., Squatrito M., Scarpace L., deCarvalho A.C., Lyu S., Li P, Li Y. et al. Tumor evolution of glioma-intrinsic gene expression subtypes associates with immunological changes in the microenvironment. Cancer Cell, 2017, Vol. 32, no. 1, pp. 42-56.

78. Wellenstein M.D., de Visser K.E. Cancer-cell-intrinsic mechanisms shaping the tumor immune landscape. Immunity, 2018, Vol. 48, no. 3, pp. 399-416.

79. Wherry T.J., Kurachi M. Molecular and cellular insights into T cell exhaustion. Nat. Rev. Immunol., 2015, Vol. 15, no. 8, pp. 486-499.

80. Whiteside T.L. Tumor-derived exosomes and their role in cancer progression. Adv. Clin. Chem., 2016, Vol. 74, pp. 103-141.

81. Whiteside T.L. Exosomes carrying immunoinhibitory proteins and their role in cancer. Clin. Exp. Immunol., 2017, Vol. 189, no. 3, pp. 259-267.

82. Whiteside T.L. Exosome and mesenchymal stem cell cross-talk in the tumor microenvironment. Semin. Immunol., 2018, Vol. 35, no. 2, pp. 69-79.

83. Workel H.H., Komdeur F.L., Wouters M.C., Plat A., Klip H.G., Eggink F.A., Wisman G.B., Arts H.J., Oonk M.H., Mourits M.J., Yigit R., Versluis M., Duiker E.W., Hollema H., de Bruyn M., Nijman H.W. CD103 defines intraepithelial CD8+ PD1+ tumour-infiltrating lymphocytes of prognostic significance in endometrial adenocarcinoma. Eur. J. Cancer, 2016, Vol. 60, pp. 1-11.

84. Zhang B., Yin Y., Lai R.C., Tan S.S., Choo A.B., Lim S.K. Mesenchymal stem cells secrete immunologically active exosomes. Stem Cells Dev., 2014, Vol. 23, no. 11, pp. 1233-1244.

85. Zhang Y., Ertl H.C. Starved and asphyxiated: How can CD8+ T cells within a tumor microenvironment prevent tumor progression. Front. Immunol., 2016, Vol. 7, 32. doi.org/10.3389/fimmu.2016.00032.

86. Zundler S., Becker E., Spocinska M., Slawik M., Parga-Vida L., Stark R., Wiendl M., Atreya T., Rath M., Leppkes M., Hildner K., Lypez-Posadas R., Lukassen S., Ekici A. B., Neufert C., Atreya I., van Gisbergen K.J.G., Neurath M.F. Hobit- and Blimp-1-driven CD4+ tissue-resident memory T cells control chronic intestinal inflammation. Nat. Immunol., 2019, Vol. 20, no. 3, pp. 288-300.


Дополнительные файлы

1. Неозаглавлен
Тема
Тип Прочее
Скачать (32KB)    
Метаданные
2. Неозаглавлен
Тема
Тип Прочее
Скачать (37KB)    
Метаданные
3. Неозаглавлен
Тема
Тип Прочее
Скачать (30KB)    
Метаданные
4. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (203KB)    
Метаданные

Для цитирования:


Олейник Е.К., Шибаев М.И., Игнатьев К.С., Олейник В.М., Жулай Г.А. Микроокружение опухоли: формирование иммунного профиля. Медицинская иммунология. 2020;22(2):207-220. https://doi.org/10.15789/1563-0625-TMT-1909

For citation:


Oleinik E.K., Shibaev M.I., Ignatiev K.S., Oleinik V.M., Zhulai G.A. Tumor microenvironment: the formation of the immune profile. Medical Immunology (Russia). 2020;22(2):207-220. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/1563-0625-TMT-1909

Просмотров: 441


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1563-0625 (Print)
ISSN 2313-741X (Online)