Preview

Медицинская иммунология

Расширенный поиск

ФЕНОТИПИЧЕСКИЕ И ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ МИКРОВЕЗИКУЛ, ПРОДУЦИРУЕМЫХ NK-КЛЕТКАМИ

https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-669-688

Полный текст:

Аннотация

Среди множества клеток-источников микровезикул (МВ) особый интерес представляют естественные киллеры (NK-клетки) - субпопуляция лимфоцитов, осуществляющая контактный цитолиз вирус-инфицированных и опухолевых клеток. Каждая из популяций NK-клеток обладает уникальным репертуаром рецепторов на своей поверхности, а, следовательно, и функциями. Функционирование NK-клеток регулируется широким диапазоном активирующих и ингибирующих рецепторов, которые экспрессируются на их поверхности. Экзоцитоз содержимого литических гранул при контакте с клеткой мишенью – самый распространённый механизм цитолиза мишени NK-клетками. В настоящее время имеются косвенные данные о способности NK-клеток продуцировать МВ, так как такие МВ с фенотипом CD56, а также МВ лейкоцитарного происхождения с различным фенотипом обнаружены в плазме периферической крови. Целью настоящего исследования явилось изучение фенотипа, состава и функциональной активности микровезикул, образуемых NK-клетками. Сравнительный анализ спонтанной экспрессии рецепторов при помощи проточной цитофлуориметрии показал, что МВ, как и клетки-источники (NK-клетки линии NK-92), обладают сходным профилем экспрессии молекул CD56 и CD16, но отличаются более выраженной экспрессией CD119 и CD11b и менее выраженной экспрессией CD18. Культивирование клеток линии NK-92 в присутствии индукторов (TNFα, IL-1β, IFNγ, PMA) приводило к изменению фенотипа как самих клеток, так и МВ, образуемых ими. По данным проведенного WesternBlot Analisis в присутствии указанных индукторов также изменялось содержание перфорина и гранзима B (GrB) в составе МВ. Анализ цитотоксической активности клеток линии NK-92 в отношении клеток линии K562 показал, что МВ, полученные от активированных TNFα клеток линии NK-92 повышают цитотоксичность активированных же TNFα клеток линии NK-92 по сравнению с уровнем их цитотоксичности в отношении клеток линии K562 без МВ, что совпадает с обнаруженным нами повышенным содержанием GrB в МВ, полученных от активированных TNFα клеток линии NK-92. Суммируя полученные данные следует отметить, что в зависимости от типа индуктора NK-клетки линии NK-92 продуцируют микрочастицы разные по фенотипу и составу. Изменение состава МВ может приводить к изменению их функциональной активности, в частности, к усилению цитотоксической активности NK-клеток.

Об авторах

Д. И. Соколов
ФГБНУ "НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им.Д.О.Отта", ГБОУ ВПО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ
Россия

д.б.н., заведующий лабораторией межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий; доцент

199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, 3

Тел.: 8 (812) 323-75-45, 328-98-50
Факс: 8 (812) 323-75-45



К. Л. Маркова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О.Отта»
Россия

младший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург

 



В. А. Михайлова
ФГБНУ "НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им.Д.О.Отта", ГБОУ ВПО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ
Россия

к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий; ассистент кафедры иммунологии

Санкт-Петербург



Л. П. Вязьмина
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

лаборант-исследователь лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург



Ю. П. Милютина
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

старший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург



А. Р. Козырева
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

лаборант-исследователь лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург



А. А. Жданова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

младший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург



Д. А. Малыгина
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

младший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург



К. В. Онохин
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный университет»
Россия

сотрудник кафедры цитологии и гистологии

Санкт-Петербург



А. Н. Иванова
Ресурсный научный центр «Развитие молекулярных и клеточных технологий» ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный университет»
Россия

научный сотрудник ресурсного научного центра «Развитие молекулярных и клеточных технологий»

Санкт-Петербург



А. В. Кореневский
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

ведущий научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург



С. А. Сельков
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта», ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ
Россия

д.м.н., профессор, руководитель отдела иммунологии и межклеточных взаимодействий; профессор

Санкт-Петербург



Список литературы

1. Aliotta J.M., Pereira M., Johnson K.W., de Paz N., Dooner M.S., Puente N., Ayala C., Brilliant K., Berz D., Lee D., Ramratnam B., McMillan P.N., Hixson D.C., Josic D.,Quesenberry P.J. Microvesicle entry into marrow cells mediates tissue-specific changes in mRNA by direct delivery of mRNA and induction of transcription. Exp Hematol, 2010, Vol.38, no 3, pp. 233-45.

2. Ardoin S.P., Shanahan J.C.,Pisetsky D.S. The role of microparticles in inflammation and thrombosis. Scand J Immunol, 2007, Vol.66, no 2-3, pp. 159-65.

3. Berchem G., Noman M.Z., Bosseler M., Paggetti J., Baconnais S., Le Cam E., Nanbakhsh A., Moussay E., Mami-Chouaib F., Janji B.,Chouaib S. Hypoxic tumor-derived microvesicles negatively regulate NK cell function by a mechanism involving TGF-beta and miR23a transfer. Oncoimmunology, 2016, Vol.5, no 4, pp. e1062968.

4. Bernimoulin M., Waters E.K., Foy M., Steele B.M., Sullivan M., Falet H., Walsh M.T., Barteneva N., Geng J.G., Hartwig J.H., Maguire P.B.,Wagner D.D. Differential stimulation of monocytic cells results in distinct populations of microparticles. J Thromb Haemost, 2009, Vol.7, no 6, pp. 1019-28.

5. Blott E.J., Bossi G., Clark R., Zvelebil M.,Griffiths G.M. Fas ligand is targeted to secretory lysosomes via a proline-rich domain in its cytoplasmic tail. J Cell Sci, 2001, Vol.114, no Pt 13, pp. 2405-16.

6. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem, 1976, Vol.72, no, pp. 248-54.

7. Bryceson Y.T., March M.E., Ljunggren H.G.,Long E.O. Activation, coactivation, and costimulation of resting human natural killer cells. Immunol Rev, 2006, Vol.214, no, pp. 73-91.

8. Camussi G., Deregibus M.C., Bruno S., Grange C., Fonsato V.,Tetta C. Exosome/microvesicle-mediated epigenetic reprogramming of cells. Am J Cancer Res, 2011, Vol.1, no 1, pp. 98-110.

9. Chiva-Blanch G., Crespo J., Suades R., Arderiu G., Padro T., Vilahur G., Cubedo J., Corella D., Salas-Salvado J., Aros F., Martinez-Gonzalez M.A., Ros E., Fito M., Estruch R.,Badimon L. CD142+/CD61+, CD146+ and CD45+ microparticles predict cardiovascular events in high risk patients following a Mediterranean diet supplemented with nuts. Thromb Haemost, 2016, Vol.116, no 1, pp. 103-14.

10. Cholujova D., Jakubikova J., Kubes M., Arendacka B., Sapak M., Ihnatko R.,Sedlak J. Comparative study of four fluorescent probes for evaluation of natural killer cell cytotoxicity assays. Immunobiology, 2008, Vol.213, no 8, pp. 629-40.

11. Clancy J.W., Tricarico C.J.,D'Souza-Schorey C. Tumor-derived microvesicles in the tumor microenvironment: How vesicle heterogeneity can shape the future of a rapidly expanding field. Bioessays, 2015, Vol.37, no 12, pp. 1309-16.

12. Cooper M.A., Fehniger T.A.,Caligiuri M.A. The biology of human natural killer-cell subsets. Trends Immunol, 2001, Vol.22, no 11, pp. 633-40.

13. Del Zotto G., Marcenaro E., Vacca P., Sivori S., Pende D., Della Chiesa M., Moretta F., Ingegnere T., Mingari M.C., Moretta A.,Moretta L. Markers and function of human NK cells in normal and pathological conditions. Cytometry B Clin Cytom, 2017, Vol.92, no 2, pp. 100-114.

14. Diehl P., Fricke A., Sander L., Stamm J., Bassler N., Htun N., Ziemann M., Helbing T., El-Osta A., Jowett J.B.,Peter K. Microparticles: major transport vehicles for distinct microRNAs in circulation. Cardiovasc Res, 2012, Vol.93, no 4, pp. 633-44.

15. Dragovic R.A., Collett G.P., Hole P., Ferguson D.J., Redman C.W., Sargent I.L.,Tannetta D.S. Isolation of syncytiotrophoblast microvesicles and exosomes and their characterisation by multicolour flow cytometry and fluorescence Nanoparticle Tracking Analysis. Methods, 2015, Vol.87, no, pp. 64-74.

16. Dudimah F.D., Abraha A., Wang X.,Whalen M.M. Activation of p44/42 in human natural killer cells decreases cell-surface protein expression: Relationship to tributyltin-induced alterations of protein expression. Toxicol Mech Methods, 2010, Vol.20, no 9, pp. 544-55.

17. Evans-Osses I., Reichembach L.H.,Ramirez M.I. Exosomes or microvesicles? Two kinds of extracellular vesicles with different routes to modify protozoan-host cell interaction. Parasitol Res, 2015, Vol.114, no 10, pp. 3567-75.

18. Fauriat C., Long E.O., Ljunggren H.G.,Bryceson Y.T. Regulation of human NK-cell cytokine and chemokine production by target cell recognition. Blood, 2010, Vol.115, no 11, pp. 2167-76.

19. Gong J.H., Maki G.,Klingemann H.G. Characterization of a human cell line (NK-92) with phenotypical and functional characteristics of activated natural killer cells. Leukemia, 1994, Vol.8, no 4, pp. 652-8.

20. Gyorgy B., Modos K., Pallinger E., Paloczi K., Pasztoi M., Misjak P., Deli M.A., Sipos A., Szalai A., Voszka I., Polgar A., Toth K., Csete M., Nagy G., Gay S., Falus A., Kittel A.,Buzas E.I. Detection and isolation of cell-derived microparticles are compromised by protein complexes resulting from shared biophysical parameters. Blood, 2011, Vol.117, no 4, pp. e39-48.

21. Gyorgy B., Szabo T.G., Pasztoi M., Pal Z., Misjak P., Aradi B., Laszlo V., Pallinger E., Pap E., Kittel A., Nagy G., Falus A.,Buzas E.I. Membrane vesicles, current state-of-the-art: emerging role of extracellular vesicles. Cell Mol Life Sci, 2011, Vol.68, no 16, pp. 2667-88.

22. Hiebert P.R.,Granville D.J. Granzyme B in injury, inflammation, and repair. Trends Mol Med, 2012, Vol.18, no 12, pp. 732-41.

23. Hsu H.T., Mace E.M., Carisey A.F., Viswanath D.I., Christakou A.E., Wiklund M., Onfelt B.,Orange J.S. NK cells converge lytic granules to promote cytotoxicity and prevent bystander killing. J Cell Biol, 2016, Vol.215, no 6, pp. 875-889.

24. Joeckel L.T.,Bird P.I. Blessing or curse? Proteomics in granzyme research. Proteomics Clin Appl, 2014, Vol.8, no 5-6, pp. 351-81.

25. Jong A.Y., Wu C.H., Li J., Sun J., Fabbri M., Wayne A.S.,Seeger R.C. Large-scale isolation and cytotoxicity of extracellular vesicles derived from activated human natural killer cells. J Extracell Vesicles, 2017, Vol.6, no 1, pp. 1294368.

26. Knoblock K.F.,Canning P.C. Modulation of in vitro porcine natural killer cell activity by recombinant interleukin-1 alpha, interleukin-2 and interleukin-4. Immunology, 1992, Vol.76, no 2, pp. 299-304.

27. Kobayashi Y., Sudo T., Matsushita N., Nakao M., Tanaka Y., Shimizu K., Tanigawa K.,Aruga A. [Preparation of NK-enriched LAK cells--their potential cytotoxic and ADCC activities]. Gan To Kagaku Ryoho, 2003, Vol.30, no 11, pp. 1776-9.

28. Komatsu F.,Kajiwara M. Relation of natural killer cell line NK-92-mediated cytolysis (NK-92-lysis) with the surface markers of major histocompatibility complex class I antigens, adhesion molecules, and Fas of target cells. Oncol Res, 1998, Vol.10, no 10, pp. 483-9.

29. Korenevskii A.V., Milyutina Y.P., Zhdanova A.A., Pyatygina K.M., Sokolov D.I.,Sel'kov S.A. Mass-Spectrometric Analysis of Proteome of Microvesicles Produced by NK-92 Natural Killer Cells. Bull Exp Biol Med, 2018, Vol.165, no 4, pp. 564-571.

30. Kowal J., Arras G., Colombo M., Jouve M., Morath J.P., Primdal-Bengtson B., Dingli F., Loew D., Tkach M.,Thery C. Proteomic comparison defines novel markers to characterize heterogeneous populations of extracellular vesicle subtypes. Proc Natl Acad Sci U S A, 2016, Vol.113, no 8, pp. E968-77.

31. Krzewski K.,Coligan J.E. Human NK cell lytic granules and regulation of their exocytosis. Front Immunol, 2012, Vol.3, no, pp. 335.

32. Lee T.H., D'Asti E., Magnus N., Al-Nedawi K., Meehan B.,Rak J. Microvesicles as mediators of intercellular communication in cancer--the emerging science of cellular 'debris'. Semin Immunopathol, 2011, Vol.33, no 5, pp. 455-67.

33. Liu M., Wang Y.L., Shang M., Wang Y., Zhang Q., Wang S.X., Wei S., Zhang K., Liu C., Wu Y.N., Liu M.L., Song J.Q.,Liu Y.X. Flow cytometric analysis of circulating microvesicles derived from myocardial Ischemic preconditioning and cardioprotection of Ischemia/reperfusion Injury in rats. Zhongguo Ying Yong Sheng Li Xue Za Zhi, 2015, Vol.31, no 6, pp. 524-31.

34. Lopez J.A., Susanto O., Jenkins M.R., Lukoyanova N., Sutton V.R., Law R.H., Johnston A., Bird C.H., Bird P.I., Whisstock J.C., Trapani J.A., Saibil H.R.,Voskoboinik I. Perforin forms transient pores on the target cell plasma membrane to facilitate rapid access of granzymes during killer cell attack. Blood, 2013, Vol.121, no 14, pp. 2659-68.

35. MacKenzie A., Wilson H.L., Kiss-Toth E., Dower S.K., North R.A.,Surprenant A. Rapid Secretion of Interleukin-1β by Microvesicle Shedding. Immunity, 2001, Vol.15, no 5, pp. 825-835.

36. Maki G., Krystal G., Dougherty G., Takei F.,Klingemann H.G. Induction of sensitivity to NK-mediated cytotoxicity by TNF-alpha treatment: possible role of ICAM-3 and CD44. Leukemia, 1998, Vol.12, no 10, pp. 1565-72.

37. Metkar S.S., Wang B., Aguilar-Santelises M., Raja S.M., Uhlin-Hansen L., Podack E., Trapani J.A.,Froelich C.J. Cytotoxic cell granule-mediated apoptosis: perforin delivers granzyme B-serglycin complexes into target cells without plasma membrane pore formation. Immunity, 2002, Vol.16, no 3, pp. 417-28.

38. Mikhailova V.A., Belyakova K.L., Selkov S.A.,Sokolov D.I. Peculiarities of NK cells differentiation: CD56dim and CD56bright NK cells at pregnancy and in non-pregnant state. Medical Immunology (Russia), 2017, Vol.19, no 1, pp. 19-26.

39. Mikhailova V.A., Belyakova K.L., Vyazmina L.P., Sheveleva A.R., Selkov S.A.,Sokolov D.I. Evaluation of microvesicles formed by natural killer (NK) cells using flow cytometry. Medical Immunology (Russia), 2018, Vol.20, no, pp. 251-254.

40. Mikhailova V.A., Ovchinnikova O.M., Zainulina M.S., Sokolov D.I.,Sel'kov S.A. Detection of microparticles of leukocytic origin in the peripheral blood in normal pregnancy and preeclampsia. Bull Exp Biol Med, 2014, Vol.157, no 6, pp. 751-6.

41. Miller V.M., Lahr B.D., Bailey K.R., Hodis H.N., Mulvagh S.L.,Jayachandran M. Specific cell-derived microvesicles: Linking endothelial function to carotid artery intima-media thickness in low cardiovascular risk menopausal women. Atherosclerosis, 2016, Vol.246, no, pp. 21-8.

42. Monleon I., Martinez-Lorenzo M.J., Monteagudo L., Lasierra P., Taules M., Iturralde M., Pineiro A., Larrad L., Alava M.A., Naval J.,Anel A. Differential secretion of Fas ligand- or APO2 ligand/TNF-related apoptosis-inducing ligand-carrying microvesicles during activation-induced death of human T cells. J Immunol, 2001, Vol.167, no 12, pp. 6736-44.

43. Morel N., Morel O., Delabranche X., Jesel L., Sztark F., Dabadie P., Freyssinet J.M.,Toti F. [Microparticles during sepsis and trauma. A link between inflammation and thrombotic processes]. Ann Fr Anesth Reanim, 2006, Vol.25, no 9, pp. 955-66.

44. Morel O., Toti F., Hugel B.,Freyssinet J.M. Cellular microparticles: a disseminated storage pool of bioactive vascular effectors. Curr Opin Hematol, 2004, Vol.11, no 3, pp. 156-64.

45. Muralidharan-Chari V., Clancy J.W., Sedgwick A.,D'Souza-Schorey C. Microvesicles: mediators of extracellular communication during cancer progression. J Cell Sci, 2010, Vol.123, no Pt 10, pp. 1603-11.

46. Neighbour P.A., Huberman H.S.,Kress Y. Human large granular lymphocytes and natural killing ultrastructural studies of strontium-induced degranulation. Eur J Immunol, 1982, Vol.12, no 7, pp. 588-95.

47. Osinska I., Popko K.,Demkow U. Perforin: an important player in immune response. Cent Eur J Immunol, 2014, Vol.39, no 1, pp. 109-15.

48. Panagiotou N., Wayne Davies R., Selman C.,Shiels P.G. Microvesicles as Vehicles for Tissue Regeneration: Changing of the Guards. Curr Pathobiol Rep, 2016, Vol.4, no 4, pp. 181-187.

49. Perl M., Denk S., Kalbitz M.,Huber-Lang M. Granzyme B: a new crossroad of complement and apoptosis. Adv Exp Med Biol, 2012, Vol.946, no, pp. 135-46.

50. Principe S., Hui A.B., Bruce J., Sinha A., Liu F.F.,Kislinger T. Tumor-derived exosomes and microvesicles in head and neck cancer: implications for tumor biology and biomarker discovery. Proteomics, 2013, Vol.13, no 10-11, pp. 1608-23.

51. Raposo G.,Stoorvogel W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends. J Cell Biol, 2013, Vol.200, no 4, pp. 373-83.

52. Rautela J.,Huntington N.D. IL-15 signaling in NK cell cancer immunotherapy. Curr Opin Immunol, 2016, Vol.44, no, pp. 1-6.

53. Robertson M.J., Cameron C., Lazo S., Cochran K.J., Voss S.D.,Ritz J. Costimulation of human natural killer cell proliferation: role of accessory cytokines and cell contact-dependent signals. Nat Immun, 1996, Vol.15, no 5, pp. 213-26.

54. Roos M.A., Gennero L., Denysenko T., Reguzzi S., Cavallo G., Pescarmona G.P.,Ponzetto A. Microparticles in physiological and in pathological conditions. Cell Biochemistry and Function, 2010, Vol.28, no 7, pp. 539-548.

55. Rousalova I.,Krepela E. Granzyme B-induced apoptosis in cancer cells and its regulation (review). Int J Oncol, 2010, Vol.37, no 6, pp. 1361-78.

56. Schneider M.K., Strasser M., Gilli U.O., Kocher M., Moser R.,Seebach J.D. Rolling adhesion of human NK cells to porcine endothelial cells mainly relies on CD49d-CD106 interactions. Transplantation, 2002, Vol.73, no 5, pp. 789-96.

57. Simak J.,Gelderman M.P. Cell membrane microparticles in blood and blood products: potentially pathogenic agents and diagnostic markers. Transfus Med Rev, 2006, Vol.20, no 1, pp. 1-26.

58. Simak J., Gelderman M.P., Yu H., Wright V.,Baird A.E. Circulating endothelial microparticles in acute ischemic stroke: a link to severity, lesion volume and outcome. J Thromb Haemost, 2006, Vol.4, no 6, pp. 1296-302.

59. Slukvin, II, Chernyshov V.P., Merkulova A.A., Vodyanik M.A.,Kalinovsky A.K. Differential expression of adhesion and homing molecules by human decidual and peripheral blood lymphocytes in early pregnancy. Cell Immunol, 1994, Vol.158, no 1, pp. 29-45.

60. Sokolov D.I., Ovchinnikova O.M., Korenkov D.A., Viknyanschuk A.N., Benken K.A., Onokhin K.V.,Selkov S.A. Influence of peripheral blood microparticles of pregnant women with preeclampsia on the phenotype of monocytes. Transl Res, 2016, Vol.170, no, pp. 112-23.

61. Susanto O., Trapani J.A.,Brasacchio D. Controversies in granzyme biology. Tissue Antigens, 2012, Vol.80, no 6, pp. 477-87.

62. Swisher S.G., Economou J.S., Holmes E.C.,Golub S.H. TNF-alpha and IFN-gamma reverse IL-4 inhibition of lymphokine-activated killer cell function. Cell Immunol, 1990, Vol.128, no 2, pp. 450-61.

63. Thery C., Ostrowski M.,Segura E. Membrane vesicles as conveyors of immune responses. Nat Rev Immunol, 2009, Vol.9, no 8, pp. 581-593.

64. Tomaniak M., Gasecka A.,Filipiak K.J. Cell-derived microvesicles in cardiovascular diseases and antiplatelet therapy monitoring - A lesson for future trials? Current evidence, recent progresses and perspectives of clinical application. Int J Cardiol, 2017, Vol.226, no, pp. 93-102.

65. Tramontano A.F., Lyubarova R., Tsiakos J., Palaia T., Deleon J.R.,Ragolia L. Circulating endothelial microparticles in diabetes mellitus. Mediators Inflamm, 2010, Vol.2010, no, pp. 250476.

66. Vacca P., Moretta L., Moretta A.,Mingari M.C. Origin, phenotype and function of human natural killer cells in pregnancy. Trends Immunol, 2011, Vol.32, no 11, pp. 517-23.

67. Vajen T., Mause S.F.,Koenen R.R. Microvesicles from platelets: novel drivers of vascular inflammation. Thromb Haemost, 2015, Vol.114, no 2, pp. 228-36.

68. Valadi H., Ekstrom K., Bossios A., Sjostrand M., Lee J.J.,Lotvall J.O. Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells. Nat Cell Biol, 2007, Vol.9, no 6, pp. 654-9.

69. van der Pol E., Boing A.N., Harrison P., Sturk A.,Nieuwland R. Classification, functions, and clinical relevance of extracellular vesicles. Pharmacol Rev, 2012, Vol.64, no 3, pp. 676-705.

70. van der Pol E., Coumans F.A., Grootemaat A.E., Gardiner C., Sargent I.L., Harrison P., Sturk A., van Leeuwen T.G.,Nieuwland R. Particle size distribution of exosomes and microvesicles determined by transmission electron microscopy, flow cytometry, nanoparticle tracking analysis, and resistive pulse sensing. J Thromb Haemost, 2014, Vol.12, no 7, pp. 1182-92.

71. Vlassov A.V., Magdaleno S., Setterquist R.,Conrad R. Exosomes: current knowledge of their composition, biological functions, and diagnostic and therapeutic potentials. Biochim Biophys Acta, 2012, Vol.1820, no 7, pp. 940-8.

72. Voskoboinik I., Whisstock J.C.,Trapani J.A. Perforin and granzymes: function, dysfunction and human pathology. Nat Rev Immunol, 2015, Vol.15, no 6, pp. 388-400.

73. Winiarska M., Bojarczuk K., Pyrzynska B., Bil J., Siernicka M., Dwojak M., Bobrowicz M., Miazek N., Zapala P., Zagozdzon A., Krol M., Syta A., Podszywalow-Bartnicka P., Pilch Z., Dabrowska-Iwanicka A., Juszczynski P., Efremov D.G., Slabicki M., Zenz T., Le Roy A., Olive D., Rygiel T.P., Leusen J.H.,Golab J. Inhibitors of SRC kinases impair antitumor activity of anti-CD20 monoclonal antibodies. MAbs, 2014, Vol.6, no 5, pp. 1300-13.

74. Xu R., Greening D.W., Zhu H.J., Takahashi N.,Simpson R.J. Extracellular vesicle isolation and characterization: toward clinical application. J Clin Invest, 2016, Vol.126, no 4, pp. 1152-62.

75. Yuan A., Farber E.L., Rapoport A.L., Tejada D., Deniskin R., Akhmedov N.B.,Farber D.B. Transfer of microRNAs by embryonic stem cell microvesicles. PLoS One, 2009, Vol.4, no 3, pp. e4722.

76. Yun S., Lee S.H., Yoon S.R., Myung P.K.,Choi I. Oxygen tension regulates NK cells differentiation from hematopoietic stem cells in vitro. Immunol Lett, 2011, Vol.137, no 1-2, pp. 70-7.

77. Zhang J., Sun R., Wei H., Zhang J.,Tian Z. Characterization of interleukin-15 gene-modified human natural killer cells: implications for adoptive cellular immunotherapy. Haematologica, 2004, Vol.89, no 3, pp. 338-47.

78. Zhang L., Zhang H., Zhu Z., Jiang L., Lu X., Zhou M., Sun X., He L., Bai Y.,Ma L. Matrine regulates immune functions to inhibit the proliferation of leukemic cells. Int J Clin Exp Med, 2015, Vol.8, no 4, pp. 5591-600.

79. Zhang M., March M.E., Lane W.S.,Long E.O. A signaling network stimulated by beta2 integrin promotes the polarization of lytic granules in cytotoxic cells. Sci Signal, 2014, Vol.7, no 346, pp. ra96.

80. Zou H., Li L., Han Y., Ma R., Liao Q., Tian J., Zhang X., Ren X., Song G., Guo Q., Li X., Ding H.,Jiang G. Upregulation of CD54 and downregulation of HLAABC contribute to the novel enhancement of the susceptibility of HL-60 cells to NK cell-mediated cytolysis induced by ATRA plus VPA. Oncol Rep, 2017, Vol.37, no 1, pp. 105-114.

81. Zwirner N.W.,Ziblat A. Regulation of NK Cell Activation and Effector Functions by the IL-12 Family of Cytokines: The Case of IL-27. Front Immunol, 2017, Vol.8, no, pp. 25.


Дополнительные файлы

1. Список литературы
Тема
Тип Прочее
Скачать (B)    
Метаданные

Для цитирования:


Соколов Д.И., Маркова К.Л., Михайлова В.А., Вязьмина Л.П., Милютина Ю.П., Козырева А.Р., Жданова А.А., Малыгина Д.А., Онохин К.В., Иванова А.Н., Кореневский А.В., Сельков С.А. ФЕНОТИПИЧЕСКИЕ И ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ МИКРОВЕЗИКУЛ, ПРОДУЦИРУЕМЫХ NK-КЛЕТКАМИ. Медицинская иммунология. 2019;21(4):669-688. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-669-688

For citation:


Sokolov D.I., Markova K.L., Mikhailova V.A., Vyazmina L.P., Milyutina Y.P., Kozyreva A.R., Zhdanova A.A., Malygina D.A., Onokhin K.V., Ivanova A.N., Korenevsky A.V., Selkov S.A. PHENOTYPIC AND FUNCTIONAL CHARACTERISTICS OF MICROVESICLES PRODUCED BY NATURAL KILLER CELLS. Medical Immunology (Russia). 2019;21(4):669-688. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-669-688

Просмотров: 166


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1563-0625 (Print)
ISSN 2313-741X (Online)