ВЛИЯНИЕ СУБКЛИНИЧЕСКОГО КЕТОЗА КОРОВ НА ФОРМИРОВАНИЕ КОЛОСТРАЛЬНОГО ИММУНИТЕТА ТЕЛЯТ

Здоровье новорожденного всецело зависит от состояния организма матери на протяжении всей беременности. Обеспечение оптимальных условий содержания беременных животных базируется, в первую очередь, на полноценном кормлении и обеспечении санитарно-гигиенических условий окружающей среды. Большую нагрузку организм коровы претерпевает в транзитный период, который начинается за 3 недели до отела и продолжается в течение шести недель. При нарушении технологии кормления и содержания у коров в данный период часто возникают метаболические нарушения, которые проявляются повышенной выработкой кетонов. Известно, что становление иммунитета в ранний постнатальный период у теленка во многом зависит от своевременной выпойки молозива. Материнские иммуноглобулины из молозива попадают непосредственно в системный кровоток новорожденного в тонком отделе кишечника по тубулярной системе эпителиальных клеток путем пиноцитоза. Задача исследования – изучить влияние субклинического кетоза у коров-матерей на формирование колострального иммунитета у родившихся от них телят. Для исследования были отобраны стельные коровы 3-6 лет за 3-7 дней до родов. У коров были взяты пробы мочи и крови. С целью выявления субклинического кетоза у коров было проведено исследование мочи на содержание кетонов. По результатам исследования были сформированы две группы по 10 голов – в первой группе (подопытной) уровень кетоновых тел в моче составил от 1,8 до 3,7 ммоль/л, во второй группе (контрольной) кетоны в моче не обнаружены. Сразу после отела у коров отбирали порции молозива, а у новорожденных телят брали кровь через сутки после первой выпойки молозива. В обезжиренном молозиве и в сыворотке крови новорожденных телят исследовали содержание иммуноглобулинов. В сыворотке крови суточных телят также определяли содержание общего белка биуретовым методом, альбуминов – фотометрическим методом с бромкрезоловым зеленым.

По результатам проведенного исследования было обнаружено снижение классов иммуноглобулинов G, M и A в сыворотке крови коров перед отелом на 19,1-23,5%, в молозиве – на 23,7-34,4% и в сыворотке крови суточных телят – на 21,7-27,6%. В наибольшей степени определялось снижение концентрации IgM. На содержание в крови телят альбуминов субклинический кетоз коров-матерей практически не оказывал влияние. 

1. Bakaeva L.N., Karamaeva A.S., Karamaev S.V. Development of immune status in newborn calves of dairy and combined breeds. Dairy and Beef Cattle Breeding, 2019, no. 1, pp. 32-36. (In Russ.)

2. Calderon D.F., Cook N.B. The effect of lameness on the resting behavior and metabolic status of dairy cattle during the transition period in a freestall-housed dairy herd. J. Dairy Sci., 2011, Vol. 94, no. 6, pp. 2883-2894.

3. Ganz S., Bülte M., Gajewski Z., Wehrend A. Inhaltsstoffe des bovinen Kolostrums – eine Übersicht [Substances in the bovine colostrum – a survey]. Tierarztl Prax Ausg G. Grosstiere Nutztiere, 2018, Vol. 46, no. 3, pp. 178-189.

4. Gonzalez L.A., Tolkamp B.J., Coffey M.P., Ferret A., Kyriazakis I. Changes in feeding behavior as possible indicators for the automatic monitoring of health disorders in dairy cows. J. Dairy Sci., 2008, Vol. 91, no. 3, pp. 1017-1028.

5. Green L.E., Hedges V.J., Schukken Y.H., Blowey R.W., Packington A.J. The impact of clinical lameness on the milk yield of dairy cows. J. Dairy Sci., 2002, Vol. 85, no. 9, pp. 2250-2256.

6. Hampe M., Wehrend A. Bestimmung der Immunglobulin-G-Versorgung beim neugeborenen Kalb [Determination of the immunoglobulin G supply in the newborn calf]. Tierarztl Prax Ausg G. Grosstiere Nutztiere, 2019, Vol. 47, no. 2, pp. 97-109.

7. Herdt T.H. Ruminant adaptation to negative energy balance. Influences on the etiology of ketosis and fatty liver. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract., 2000, Vol. 16, no. 2, pp. 215-230.

8. Kostyna M.A. Rapid method for the determination of immunoglobulins in blood serum and colostrum with zinc-sulfate solution and its use for assessing the resistance of newborn calves. Collection of scientific papers All-Union Research Institute of Non-communicable Animal Diseases “Problems of increasing animal resistance”. Voronezh, 1983, pp. 71-76. (In Russ.)

9. Mahrt A., Burfeind O., Heuwieser W. Evaluation of hyperketonemia risk period and screening protocols for early-lactation dairy cows. J. Dairy Sci., 2015, Vol. 98, no. 5, pp. 3110-3119.

10. Ovcharenko E.V., Ivanov A.A., Lyublinskii S.L. Biological properties of colostrum and its use in animal production and medicine. II. Technological and practical aspects (a review). Problems of the Biology of Productive Animals, 2012, no. 3, pp. 5-21. (In Russ.)

11. Senger. Ph. L. Pathways to pregnancy and parturition. 3rd Edition. Redmond, OR: Current Conceptions, 2012. 390 р.

12. Skopichev V.G, Maksimyuk N.N. Physiological and biochemical bases of animal resistance: textbook. St. Petersburg: Lan, 2009. 352 p. (In Russ.)

13. Vanholder T., Papen J., Bemers R., Vertenten G., Berge A.C. Risk factors for subclinical and clinical ketosis and association with production parameters in dairy cows in the Netherlands. J. Dairy Sci., 2015, Vol. 98, no. 2, pp. 880-888.

14. Vasilieva S.V., Konopatov Yu.V. Clinical biochemistry of cattle: a textbook for. 3rd ed. St. Petersburg: Lan, 2021. 188 p. . (In Russ.)

15. Veenhuizen J.J., Drackley J.K., Richard M.J., Sanderson T.P., Miller L.D., Young J.W. Metabolic changes in blood and liver during development and early treatment of experimental fatty liver and ketosis in cows. J. Dairy Sci., 1991, Vol. 74, no. 12, pp. 4238-4253.

16. Weaver D.M., Tyler J.W., VanMetre D.C., Hostetler D.E., Barrington G.M. Passive transfer of colostral immunoglobulins in calves. J. Vet. Intern. Med., 2000, Vol. 14, no. 6, pp. 569-577.