Preview

Медицинская иммунология

Расширенный поиск

ЦИТОКИНОВЫЙ ПРОФИЛЬ В КРОВИ И РЕПАРАЦИЯ В ОЧАГЕ ПОВРЕЖДЕНИЯ В ДИНАМИКЕ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ТЕРМИЧЕСКОЙ ТРАВМЫ В УСЛОВИЯХ ЛОКАЛЬНОГО ИЛИ СИСТЕМНОГО ПРИМЕНЕНИЯ МЕЛАТОНИНА

https://doi.org/10.15789/1563-0625-BCP-2214

Полный текст:

Аннотация

Ожоговый травматизм представляет одну из ключевых медико-социальных проблем. Несмотря на значительные достижения в комбустиологии, медленное заживление и присоединение инфекции составляют ключевые проблемы у ожоговых больных, приводящие к удлинению сроков госпитализации, снижению качества жизни и эмоциональным расстройствам. До 70% всех осложнений после термической травмы (ТТ) связаны с инфекцией – это, прежде всего, пневмония, инфекции мочевыводящих путей. Формирование инфекционных осложнений, включая сепсис, после ТТ связывают с избыточными иммуносупрессивными реакциями, в том числе как компенсацию на длительный, устойчивый провоспалительный ответ, в частности обусловленными гиперпродукцией и эффектами IL-10, IL-4, TGF-β. Цель работы: изучить влияние системного и локального в составе оригинальной дермальной пленки (ДП) применения МТ на показатели репарации и концентрацию в сыворотке некоторых цитокинов в динамике экспериментальной ТТ. Работа выполнена на 84 крысах – самцах линии Wistar массой 240±20 г, которые случайным образом разделены на 4 группы: группа 1 (n = 12) – интактный контроль, группа 2 (n = 30) – животные с ТТ, группа 3 (n = 21) – животные с ТТ и наложением ДП с МТ на область ожога, группа 4 (n = 21) – животные с ТТ и внутрибрюшинным введением МТ. Для моделирования ТТ IIIА степени и относительной площадью 3,5% изолированный участок кожи межлопаточной области погружали в дистиллированную воду с температурой 98-990 С на 12 с. ДП с МТ (в концентрации 0,005 г/г) площадью 12 см2 в группе 3 наносили сразу после ТТ, закрепляя асептической повязкой, перевязку осуществляли ежедневно в течение 5 суток. Внутрибрюшинно вводили МТ ежедневно в дозе 10 мг/кг в течение 5 суток. На 5-е, 10-е и 20-е сутки от момента индукции ТТ вычисляли площадь раны, скорость эпителизации в сыворотке определяли концентрацию интерлейкина-4 (IL-4), фактора некроза опухолей альфа (TNFα), интерферона-гамма (IFNγ). При экспериментальной ТТ в динамике наблюдений от 5-х к 20-м суткам уменьшается абсолютная и относительная площадь раневого дефекта, в связи с чем прогрессивно увеличивается скорость эпителизации раны и доля уменьшения ее площади, на 5-е, 10-е и 20-е сутки в сыворотке увеличивается концентрация TNFα и IL-4 с максимальными значениями на 10-е сутки наблюдения. Локальное применение МТ в составе ДП при ТТ ускоряет заживление ожоговой раны и снижает в сыворотке концентрацию TNFα и IL-4 на 5-е, 10-е и 20-е сутки. Внутрибрюшинное применение МТ при ТТ ускоряет заживление ожоговой раны и снижает в сыворотке концентрацию TNFα на 10-е и 20-е сутки. Ускоряющий репарацию эффект МТ при ТТ более выражен при локальном применении в составе ДП по сравнению с внутрибрюшинным введением. 

Об авторах

М. В. Осиков
ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ
Россия

д.м.н., профессор, заведующий кафедрой патологической физиологии,

454092, г. Челябинск, ул. Воровского, 64



А. А. Агеева
ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ
Россия

ассистент кафедры патологической физиологии,

454092, г. Челябинск, ул. Воровского, 64



Список литературы

1. Boutin J.A., Ferry G. Is there sufficient evidence that the melatonin binding Site MT3 is Quinone Reductase 2? J. Pharmacol. Exp. Ther., 2019, no. 368, pp. 59–65. doi:10.1124/jpet.118.253260.

2. Dong K., Goyarts E., Rella A., Pelle E., Wong Y.H., Pernodet N. Age associated decrease of MT-1 melatonin receptor in human dermal skin fibroblasts impairs protection against UV-induced DNA damage. Int. J. Mol. Sci., 2020, Vol. 21, no. 1, pp. E326. doi: 10.3390/ijms21010326.

3. Favero G., Franceschetti L., Bonomini F., et al. Melatonin as an anti-inflammatory agent modulating inflammasome activation. Int. J. Endocrinol., 2017, no. 2017, pp. 1835195. doi: 10.1155/2017/1835195.

4. Galano A., Tan D.X., Reiter R.J. Melatonin: a versatile protector against oxidative DNA damage. Molecules, 2018, no. 23, pp. E530. doi:10.3390/molecules23030530.

5. Hardeland R. Aging, melatonin, and the pro- and anti-inflammatory networks. Int. J. Mol. Sci., 2019, Vol. 20, no. 5, pii: 1223. doi:10.3390/ijms20051223.

6. Lateef Z., Stuart G., Jones N., Mercer A., Fleming S., Wise L. The cutaneous inflammatory response to thermal burn injury in a murine model. Int. J. Mol. Sci., 2019, Vol. 20, no. 3, pii: E538. doi: 10.3390/ijms20030538

7. Loynes C.A., Lee J.A., Robertson A.L., Steel M.J., Ellett F., Feng Y., Levy B.D., Whyte M.K., Renshaw S.A. PGE2 production at sites of tissue injury promotes an anti-inflammatory neutrophil phenotype and determines the outcome of inflammation resolution in vivo. Sci. Adv., 2018, no. 4, pp. eaar8320. doi:10.1126/sciadv.aar8320.

8. Mayo J.C., Aguado A., Cernuda-Cernuda R., Alvarez-Artime A., Cepas V., Quiros-Gonzalez I., et al. Melatonin uptake by cells: an answer to its relationship with glucose? Molecules, 2018, no. 23, pp. e1999. doi:10.3390/molecules23081999.

9. Nishiguchi T., Ito I., Lee J.O., Suzuki S., Suzuki F., Kobayashi M. Macrophage polarization and MRSA infection in burned mice. Immunol. Cell Biol, 2017, Vol. 95, no. 2, pp. 198-206. doi:10.1038/icb.2016.84.

10. Osikov M.V., Simoyan E.V., Saedgalina O.T. Effect of erythropoietin on the quantitative composition and apoptosis of lymphocytes of peripheral blood in dynamic of experimental thermal injury. Russian Journal of Immunology, 2016, Vol. 10 (19), no. 2-1, pp. 479-481. (In Russ.)

11. Osikov M.V., Simoyan E.V., Saedgalina O.T. Erythropoietin influence in trancedermal film on the indicators of immune status of rat in experimental thermal injury. Experimental and Clinical Pharmacology, 2018, Vol. 81, no. 8, pp. 13-18. (In Russ.)

12. Osikov M.V., Simoyan E.V., Saedgalina O.T. Influence of melatonin on innate immunity in experimental desynchronosis under led lighting conditions. Russian Journal of Immunology, 2015, Vol. 9 (18), no, 3-1, pp. 154-156. (In Russ.)

13. Saavedra P.A., deBrito E.S., Areda C.A., Escalda P.M., Galato D. Burns in the Brazilian Unified Health System: a review of hospitalization from 2008 to 2017. Int. J. Burns Trauma, 2019, Vol. 9, no. 5, pp. 88-98.

14. Slominski A.T., Semak I., Fischer T.W., Kim T.-K., Kleszczyński K., Hardeland R., Reiter R.J. Metabolism of melatonin in the skin: why is it important? Experimental Dermatology, 2017, Vol. 26, no. 7, pp. 563–568. doi:10.1111/exd.13208.

15. Wang Y., Beekman J., Hew J., Jackson S., Issler-Fisher A.C., Parungao R., Lajevardi S.S., Li Z., Maitz P.K.M. Burn injury: challenges and advances in burn wound healing, infection, pain and scarring. Adv. Drug Deliv. Rev., 2018, no. 123, pp. 3-17. doi:10.1016/j.addr.2017.09.018.


Для цитирования:


Осиков М.В., Агеева А.А. ЦИТОКИНОВЫЙ ПРОФИЛЬ В КРОВИ И РЕПАРАЦИЯ В ОЧАГЕ ПОВРЕЖДЕНИЯ В ДИНАМИКЕ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ТЕРМИЧЕСКОЙ ТРАВМЫ В УСЛОВИЯХ ЛОКАЛЬНОГО ИЛИ СИСТЕМНОГО ПРИМЕНЕНИЯ МЕЛАТОНИНА. Медицинская иммунология. 2021;23(4):705-710. https://doi.org/10.15789/1563-0625-BCP-2214

For citation:


Osikov M.V., Ageeva A.A. BLOOD CYTOKINE PROFILE AND LESION SITE REPAIR IN DYNAMICS OF EXPERIMENTAL THERMAL TRAUMA AFTER LOCAL AND SYSTEMIC MELATONIN ADMINISTRATION. Medical Immunology (Russia). 2021;23(4):705-710. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/1563-0625-BCP-2214

Просмотров: 114


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1563-0625 (Print)
ISSN 2313-741X (Online)