Preview

Медицинская иммунология

Расширенный поиск

ДИФФЕРЕНЦИРОВКА NK-КЛЕТОК. ВЗГЛЯД ЧЕРЕЗ ПРИЗМУ ТРАНСКРИПЦИОННЫХ ФАКТОРОВ И ВНУТРИКЛЕТОЧНЫХ МЕССЕНДЖЕРОВ

https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-1-21-38

Полный текст:

Аннотация

Все лимфоидные клетки относят к врожденному или адаптивному звену иммунитета согласно механизмам реализации иммунных реакций. Реализация функциональной активности NK-клеток не связана с процессами предварительной активации в результате контакта с антигеном, реаранжировкой генов антигенраспознающих рецепторов и клональной пролиферацией. В связи с этим NK-клетки традиционно относят к клеткам врожденного иммунитета. Ранее полагали, что единственной популяцией лимфоидных клеток врожденного иммунитета являются NK-клетки, однако в последние годы в литературе появляется все больше свидетельств существования различных популяций этих клеток, что послужило основанием для выделения общего кластера под названием «лимфоидные клетки врожденного иммунитета» (Innate Lymphoid Cells – ILC). По классификации ILC NK-клетки относят к первой группе врожденных лимфоидных клеток согласно их общим функциональным характеристикам, а также участию транскрипционного фактора T-bet в их дифференцировке. Сложность, многоэтапность и частично нелинейный характер дифференцировки NK-клеток связаны с влиянием клеточного микроокружения, последовательной экспрессией транскрипционных факторов и активацией различных внутриклеточных путей передачи сигнала в NK-клетках. В обзоре рассматривается место NK-клеток в классификации ILC, основные транскрипционные факторы, участвующие в процессе дифференцировки NK-клеток. Авторами предпринимается попытка обобщить основные пути внутриклеточной передачи сигнала в NK-клетках в зависимости от активации цитокинами, присутствующими в клеточном микроокружении и оказывающими влияние на NK-клетки. Особым объектом дифференцировки NK-клеток являются NK-клетки децидуальной оболочки при беременности. Кроме NK-клеток, в составе децидуальной оболочки присутствуют стромальные клетки, клетки трофобласта, макрофаги. В обзоре рассмотрен частный случай влияния клеток микроокружения на экспрессию транскрипционных факторов и активацию внутриклеточных мессенджеров NK-клеток на примере клеток трофобласта. Открытое в настоящее время многообразие NK-клеток, реализующееся в зависимости от микроокружения в процессе их дифференцировки, требует дальнейшего изучения.

Об авторах

В. А. Михайлова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ГБОУ ВПО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ
Россия

к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; кафедра иммунологии ГБОУ ВПО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова»

199034, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, 3. Тел.: 8 (812) 328-98-50

 





Д. О. Баженов
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

младший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий 

Санкт-Петербург



К. Л. Белякова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

младший научный сотрудник лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий 

Санкт-Петербург



С. А. Сельков
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»
Россия

д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки, заведующий отделом иммунологии и межклеточных взаимодействий

Санкт-Петербург



Д. И. Соколов
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ГБОУ ВПО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ; ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины»
Россия

д.б.н., заведующий лабораторией межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий; кафедра иммунологии; отдел иммунологии 

Санкт-Петербург



Список литературы

1. Ali A.K., Oh J.S., Vivier E., Busslinger M., Lee S.H. NK Cell-specific Gata3 ablation identifies the maturation program required for bone marrow exit and control of proliferation. J. Immunol., 2016, Vol. 196, no. 4, pp. 1753-1767.

2. Aliahmad P., de la Torre B., Kaye J. Shared dependence on the DNA-binding factor TOX for the development of lymphoid tissue-inducer cell and NK cell lineages. Nat. Immunol., 2010, Vol. 11, no. 10, pp. 945-952.

3. Ashkar A.A., Black G.P., Wei Q., He H., Liang L., Head J.R., Croy B.A. Assessment of requirements for IL- 15 and IFN regulatory factors in uterine NK cell differentiation and function during pregnancy.J. Immunol., 2003, Vol. 171, no. 6, pp. 2937-2944.

4. Bernink J.H., Peters C.P., Munneke M., te Velde A.A., Meijer S.L., Weijer K., Hreggvidsdottir H.S., Heinsbroek S.E., Legrand N., Buskens C.J., Bemelman W.A., Mjosberg J.M., Spits H. Human type 1 innate lymphoid cells accumulate in inflamed mucosal tissues. Nat. Immunol., 2013, Vol. 14, no. 3, pp. 221-229.

5. Billot K., Parizot C., Arrouss I., Mazier D., Debre P., Rogner U.C., Rebollo A. Differential aiolos expression in human hematopoietic subpopulations. Leuk. Res., 2010, Vol. 34, no. 3, pp. 289-293.

6. Boulenouar S., Doisne J.M., Sferruzzi-Perri A., Gaynor L.M., Kieckbusch J., Balmas E., Yung H.W., Javadzadeh S., Volmer L., Hawkes D.A., Phillips K., Brady H.J., Fowden A.L., Burton G.J., Moffett A., Colucci F. The residual innate lymphoid cells in NFIL3-deficient mice support suboptimal maternal adaptations to pregnancy. Front. Immunol., 2016, Vol. 7, p. 43.

7. Budagian V., Bulanova E., Paus R., Bulfone-Paus S. IL-15/IL-15 receptor biology: a guided tour through an expanding universe.Cytokine Growth Factor Rev., 2006, Vol. 17, no. 4, pp. 259-280.

8. Caligiuri M.A., Murray C., Robertson M.J., Wang E., Cochran K., Cameron C., Schow P., Ross M.E., Klumpp T.R., Soiffer R.J., Smith K.A., Ritz J. Selective modulation of human natural killer cells in vivoafter prolonged infusion of low dose recombinant interleukin 2. J. Clin. Invest., 1993, Vol. 91, no. 1, pp. 123-132.

9. Cerdeira A.S., Rajakumar A., Royle C.M., Lo A., Husain Z., Thadhani R.I., Sukhatme V.P., Karumanchi S.A., Kopcow H.D. Conversion of peripheral blood NK cells to a decidual NK-like phenotype by a cocktail of defined factors.J. Immunol., 2013, Vol. 190, no. 8, pp. 3939-3948.

10. Chen X., Allan D.S., Krzewski K., Ge B., Kopcow H., Strominger J.L. CD28-stimulated ERK2 phosphorylation is required for polarization of the microtubule organizing center and granules in YTS NK cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2006, Vol. 103, no. 27, pp. 10346-10351.

11. Constantinides M.G., McDonald B.D., Verhoef P.A., Bendelac A. A committed precursor to innate lymphoid cells. Nature, 2014, Vol. 508, no. 7496, pp. 397-401.

12. Cortez V.S., Ulland T.K., Cervantes-Barragan L., Bando J.K., Robinette M.L., Wang Q., White A.J., Gilfillan S., Cella M., Colonna M. SMAD4 impedes the conversion of NK cells into ILC1-like cells by curtailing non-canonical TGF-beta signaling. Nat. Immunol., 2017, Vol. 18, no. 9, pp. 995-1003.

13. Crellin N.K., Trifari S., Kaplan C.D., Satoh-Takayama N., di Santo J.P., Spits H. Regulation of cytokine secretion in human CD127(+) LTi-like innate lymphoid cells by Toll-like receptor 2. Immunity, 2010, Vol. 33, no. 5, pp. 752-764.

14. Debierre-Grockiego F. Anti-apoptotic role of STAT5 in haematopoietic cells and in the pathogenesis of malignancies. Apoptosis, 2004, Vol. 9, no. 6, pp. 717-728.

15. Delconte R.B., Kolesnik T.B., Dagley L.F., Rautela J., Shi W., Putz E.M., Stannard K., Zhang J.G., Teh C., Firth M., Ushiki T., Andoniou C.E., Degli-Esposti M.A., Sharp P.P., Sanvitale C.E., Infusini G., Liau N.P., Linossi E.M., Burns C.J., Carotta S., Gray D.H., Seillet C., Hutchinson D.S., Belz G.T., Webb A.I., Alexander W.S., Li S.S., Bullock A.N., Babon J.J., Smyth M.J., Nicholson S.E., Huntington N.D. CIS is a potent checkpoint in NK cell-mediated tumor immunity. Nat. Immunol., 2016, Vol. 17, no. 7, pp. 816-824.

16. Delconte R.B., Shi W., Sathe P., Ushiki T., Seillet C., Minnich M., Kolesnik T.B., Rankin L.C., Mielke L.A., Zhang J.G., Busslinger M., Smyth M.J., Hutchinson D.S., Nutt S.L., Nicholson S.E., Alexander W.S., Corcoran L.M., Vivier E., Belz G.T., Carotta S., Huntington N.D. The Helix-Loop-Helix protein ID2 governs NK cell fate by tuning their sensitivity to interleukin-15. Immunity, 2016, Vol. 44, no. 1, pp. 103-115.

17. Deng Y., Kerdiles Y., Chu J., Yuan S., Wang Y., Chen X., Mao H., Zhang L., Zhang J., Hughes T., Deng Y., Zhang Q., Wang F., Zou X., Liu C.G., Freud A.G., Li X., Caligiuri M.A., Vivier E., Yu J. Transcription factor Foxo1 is a negative regulator of natural killer cell maturation and function.Immunity, 2015, Vol. 42, no. 3, pp. 457-470.

18. Diefenbach A., Colonna M., Koyasu S. Development, differentiation, and diversity of innate lymphoid cells. Immunity, 2014, Vol. 41, no. 3, pp. 354-365.

19. Doisne J.M., Balmas E., Boulenouar S., Gaynor L.M., Kieckbusch J., Gardner L., Hawkes D.A., Barbara C.F., Sharkey A.M., Brady H.J., Brosens J.J., Moffett A., Colucci F. Composition, development, and function of uterine innate lymphoid cells.J. Immunol., 2015, Vol. 195, no. 8, pp. 3937-3945.

20. Erick T.K., Brossay L. Phenotype and functions of conventional and non-conventional NK cells. Curr. Opin. Immunol., 2016, Vol. 38, pp. 67-74.

21. Fu B., Zhou Y., Ni X., Tong X., Xu X., Dong Z., Sun R., Tian Z., Wei H. Natural killer cells promote fetal development through the secretion of growth-promoting factors.Immunity, 2017, Vol. 47, no. 6, pp. 1100-1113 e6.

22. Fu Q., Sun Y., Tao Y., Piao H., Wang X., Luan X., Du M., Li D. Involvement of the JAK-STAT pathway in collagen regulation of decidual NK cells. Am. J. Reprod. Immunol., 2017, Vol. 78, no. 6. doi:10.1111/aji.12769.

23. Gabrielli S., Ortolani C., del Zotto G., Luchetti F., Canonico B., Buccella F., Artico M., Papa S., Zamai L. The Memories of NK сells: Innate-adaptive immune intrinsic crosstalk. J. Immunol. Res., 2016, Vol. 2016, 1376595. doi: 10.1155/2016/1376595.

24. Gordon S.M., Chaix J., Rupp L.J., Wu J., Madera S., Sun J.C., Lindsten T., Reiner S.L. The transcription factors T-bet and Eomes control key checkpoints of natural killer cell maturation. Immunity, 2012, Vol. 36, no. 1, pp. 55-67.

25. Gotthardt D., Putz E.M., Grundschober E., Prchal-Murphy M., Straka E., Kudweis P., Heller G., Bago-Horvath Z., Witalisz-Siepracka A., Cumaraswamy A.A., Gunning P.T., Strobl B., Muller M., Moriggl R., Stockmann C., Sexl V. STAT5 Is a key regulator in NK cells and acts as a molecular switch from tumor surveillance to tumor promotion. Cancer Discov., 2016, Vol. 6, no. 4, pp. 414-429.

26. Gotthardt D., Putz E.M., Straka E., Kudweis P., Biaggio M., Poli V., Strobl B., Muller M., Sexl V. Loss of STAT3 in murine NK cells enhances NK cell-dependent tumor surveillance. Blood, 2014, Vol. 124, no. 15, pp. 2370- 2379.

27. Gotthardt D., Sexl V. STATs in NK-Cells: the good, the bad, and the ugly. Front. Immunol., 2016, Vol. 7, p. 694.

28. Hazenberg M.D., Spits H. Human innate lymphoid cells. Blood, 2014, Vol. 124, no. 5, pp. 700-709.

29. Holmes M.L., Huntington N.D., Thong R.P., Brady J., Hayakawa Y., Andoniou C.E., Fleming P., Shi W., Smyth G.K., Degli-Esposti M.A., Belz G.T., Kallies A., Carotta S., Smyth M.J., Nutt S.L. Peripheral natural killer cell maturation depends on the transcription factor Aiolos. EMBO J., 2014, Vol. 33, no. 22, pp. 2721-2734.

30. Hoorweg K., Peters C.P., Cornelissen F., Aparicio-Domingo P., Papazian N., Kazemier G., Mjosberg J.M., Spits H., Cupedo T. Functional differences between human NKp44(-) and NKp44(+) RORC(+) innate lymphoid cells.Front. Immunol., 2012, Vol. 3, p. 72.

31. Jamil K.M., Hydes T.J., Cheent K.S., Cassidy S.A., Traherne J.A., Jayaraman J., Trowsdale J., Alexander G.J., Little A.M., McFarlane H., Heneghan M.A., Purbhoo M.A., Khakoo S.I. STAT4-associated natural killer cell tolerance following liver transplantation. Gut, 2017, Vol. 66, no. 2, pp. 352-361.

32. Jiang K., Zhong B., Gilvary D.L., Corliss B.C., Vivier E., Hong-Geller E., Wei S., Djeu J.Y. Syk regulation of phosphoinositide 3-kinase-dependent NK cell function.J. Immunol., 2002, Vol. 168, no. 7, pp. 3155-3164.

33. Judge C.J., Kostadinova L., Sherman K.E., Butt A.A., Falck-Ytter Y., Funderburg N.T., Landay A.L., Lederman M.M., Sieg S.F., Sandberg J.K., Anthony D.D. CD56bright NK IL-7Ralpha expression negatively associates with HCV level, and IL-7-induced NK function is impaired during HCV and HIV infections. J. Leukoc. Biol., 2017, Vol. 102, no. 1, pp. 171-184.

34. King A., Allan D.S., Bowen M., Powis S.J., Joseph S., Verma S., Hiby S.E., McMichael A.J., Loke Y.W., Braud V.M. HLA-E is expressed on trophoblast and interacts with CD94/NKG2 receptors on decidual NK cells. Eur. J. Immunol., 2000, Vol. 30, no. 6, pp. 1623-1631.

35. Kovalenko E.I., Streltsova M.A. Adaptive features of natural killer cells, lymphocytes of innate immunity. Russ. J. Bioorganic Chem., 2016, Vol. 42, no. 6, pp. 590-605.

36. Kucuk C., Jiang B., Hu X., Zhang W., Chan J.K., Xiao W., Lack N., Alkan C., Williams J.C., Avery K.N., Kavak P., Scuto A., Sen E., Gaulard P., Staudt L., Iqbal J., Zhang W., Cornish A., Gong Q., Yang Q., Sun H., d’Amore F., Leppa S., Liu W., Fu K., de Leval L., McKeithan T., Chan W.C. Activating mutations of STAT5B and STAT3 in lymphomas derived from gammadelta-T or NK cells. Nat. Commun., 2015, Vol. 6, p. 6025.

37. Lee J.C., Lee K.M., Ahn Y.O., Suh B., Heo D.S. A possible mechanism of impaired NK cytotoxicity in cancer patients: down-regulation of DAP10 by TGF-beta1. Tumori, 2011, Vol. 97, no. 3, pp. 350-357.

38. Li C., Ge B., Nicotra M., Stern J.N., Kopcow H.D., Chen X., Strominger J.L. JNK MAP kinase activation is required for MTOC and granule polarization in NKG2D-mediated NK cell cytotoxicity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2008, Vol. 105, no. 8, pp. 3017-3022.

39. Lohoff M., Duncan G.S., Ferrick D., Mittrucker H.W., Bischof S., Prechtl S., Rollinghoff M., Schmitt E., Pahl A., Mak T.W. Deficiency in the transcription factor interferon regulatory factor (IRF)-2 leads to severely compromised development of natural killer and T helper type 1 cells. J. Exp. Med., 2000, Vol. 192, no. 3, pp. 325-336.

40. Male V., Brady H.J. Transcriptional control of NK cell differentiation and function. Curr. Top Microbiol. Immunol., 2014, Vol. 381, pp. 173-187.

41. Male V., Nisoli I., Kostrzewski T., Allan D.S., Carlyle J.R., Lord G.M., Wack A., Brady H.J. The transcription factor E4bp4/Nfil3 controls commitment to the NK lineage and directly regulates Eomes and Id2 expression.J. Exp. Med., 2014, Vol. 211, no. 4, pp. 635-642.

42. Mao Y., van Hoef V., Zhang X., Wennerberg E., Lorent J., Witt K., Masvidal L., Liang S., Murray S., Larsson O., Kiessling R., Lundqvist A. IL-15 activates mTOR and primes stress-activated gene expression leading to prolonged antitumor capacity of NK cells. Blood, 2016, Vol. 128, no. 11, pp. 1475-1489.

43. Matsumoto J., Kawana K., Nagamatsu T., Schust D.J., Fujii T., Sato H., Hyodo H., Yasugi T., Kozuma S., Taketani Y. Expression of surface CD1d in the extravillous trophoblast cells of early gestational placenta is downregulated in a manner dependent on trophoblast differentiation. Biochem. Biophys. Res. Commun., 2008, Vol. 371, no. 2, pp. 236-241.

44. Mikhailova V.A., Belyakova K.L., Selkov S.A., Sokolov D.I. Peculiarities of NK cells differentiation: CD56dim and CD56 bright NK cells at pregnancy and in non-pregnant state. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2017, Vol. 19, no. 1, pp. 19-26. doi: 10.15789/1563-0625-2017-1-19-26.

45. Mikhaylova V.A., Selkov S.A., Sokolov D.I. Phenotypiс and functional characteristics of NK cells in pregnancy.Scientific and Practical Journal “Obstetrics and Gynecology”, 2011, Vol. 5, pp. 4-9.

46. Mishra A., Sullivan L., Caligiuri M.A. Molecular pathways: interleukin-15 signaling in health and in cancer. Clin. Cancer Res., 2014, Vol. 20, no. 8, pp. 2044-2050.

47. Montaldo E., Vacca P., Chiossone L., Croxatto D., Loiacono F., Martini S., Ferrero S., Walzer T., Moretta L., Mingari M.C. Unique eomes(+) NK cell subsets are present in uterus and decidua during early pregnancy. Front. Immunol., 2015, Vol. 6, p. 646.

48. Ogasawara K., Hida S., Azimi N., Tagaya Y., Sato T., Yokochi-Fukuda T., Waldmann T.A., Taniguchi T., Taki S. Requirement for IRF-1 in the microenvironment supporting development of natural killer cells. Nature, 1998, Vol. 391, no. 6668, pp. 700-703.

49. Park S.Y., Yun S., Ryu B.J., Han A.R., Lee S.K. Trophoblasts regulate natural killer cells via control of interleukin-15 receptor signaling. Am. J. Reprod. Immunol., 2017, Vol. 78, no. 2. doi: 10.1111/aji.12628.

50. Peng J., Monsivais D., You R., Zhong H., Pangas S.A., Matzuk M.M. Uterine activin receptor-like kinase 5 is crucial for blastocyst implantation and placental development. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2015, Vol. 112, no. 36, E5098-107.doi :10.1073/pnas.1514498112.

51. Pinho M.J., Marques C.J., Carvalho F., Punzel M., Sousa M., Barros A. Genetic regulation on ex vivodifferentiated natural killer cells from human umbilical cord blood CD34 + cells.J. Recept. Signal Transduct Res., 2012, Vol. 32, no. 5, pp. 238-249.

52. Ramirez K., Chandler K.J., Spaulding C., Zandi S., Sigvardsson M., Graves B.J., Kee B.L. Gene deregulation and chronic activation in natural killer cells deficient in the transcription factor ETS1. Immunity, 2012, Vol. 36, no. 6, pp. 921-932.

53. Rautela J., Huntington N.D. IL-15 signaling in NK cell cancer immunotherapy. Curr. Opin. Immunol., 2017, Vol. 44, pp. 1-6.

54. Redhead M.L., Portilho N.A., Felker A.M., Mohammad S., Mara D.L., Croy B.A. The transcription factor NFIL3 is essential for normal placental and embryonic development but not for uterine natural killer (UNK) cell differentiation in mice.Biol. Reprod., 2016, Vol. 94, no. 5, p. 101.

55. Robbins S.H., Tessmer M.S., van Kaer L., Brossay L. Direct effects of T-bet and MHC class I expression, but not STAT1, on peripheral NK cell maturation. Eur. J. Immunol., 2005, Vol. 35, no. 3, pp. 757-765.

56. Robinette M.L., Fuchs A., Cortez V.S., Lee J.S., Wang Y., Durum S.K., Gilfillan S., Colonna M. Immunological Genome C. Transcriptional programs define molecular characteristics of innate lymphoid cell classes and subsets. Nat. Immunol., 2015, Vol. 16, no. 3, pp. 306-317.

57. Rouce R.H., Shaim H., Sekine T., Weber G., Ballard B., Ku S., Barese C., Murali V., Wu M.F., Liu H., Shpall E.J., Bollard C.M., Rabin K.R., Rezvani K. The TGF-beta/SMAD pathway is an important mechanism for NK cell immune evasion in childhood B-acute lymphoblastic leukemia.Leukemia, 2016, Vol. 30, no. 4, pp. 800-811.

58. Schilling B., Yeh J. Transforming growth factor-beta(1), -beta(2), -beta(3) and their type I and II receptors in human term placenta. Gynecol. Obstet. Invest., 2000, Vol. 50, no. 1, pp. 19-23.

59. Scoville S.D., Freud A.G., Caligiuri M.A. Modeling human natural killer cell development in the era of innate lymphoid cells.Front. Immunol., 2017, Vol. 8, p. 360.

60. Seillet C., Belz G.T., Huntington N.D. Development, homeostasis, and heterogeneity of NK cells and ILC1. Curr. Top Microbiol. Immunol., 2016, Vol. 395, pp. 37-61.

61. Seillet C., Huntington N.D., Gangatirkar P., Axelsson E., Minnich M., Brady H.J., Busslinger M., Smyth M.J., Belz G.T., Carotta S. Differential requirement for Nfil3 during NK cell development.J. Immunol., 2014, Vol. 192, no. 6, pp. 2667-2676.

62. Sharma S., Godbole G., Modi D. Decidual control of trophoblast invasion. Am. J. Reprod. Immunol., 2016, Vol. 75, no. 3, pp. 341-350.

63. Shwetank, Date O.S., Carbone E., Manjunath R. Inhibition of ERK and proliferation in NK cell lines by soluble HLA-E released from Japanese encephalitis virus infected cells. Immunol. Lett., 2014, Vol. 162, no. 1, Pt A, pp. 94-100.

64. Sim G.C., Wu S., Jin L., Hwu P., Radvanyi L.G. Defective STAT1 activation associated with impaired IFN-gamma production in NK and T lymphocytes from metastatic melanoma patients treated with IL-2. Oncotarget, 2016, Vol. 7, no. 24, pp. 36074-36091.

65. Simonetta F., Pradier A., Bosshard C., Masouridi-Levrat S., Chalandon Y., Roosnek E. NK cell functional impairment after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation is associated with reduced levels of T-bet and eomesodermin.J. Immunol., 2015, Vol. 195, no. 10, pp. 4712-4720.

66. Simoni Y., Newell E.W. Dissecting human ILC heterogeneity: more than just three subsets.Immunology, 2018, Vol. 153, no. 3, pp. 297-303.

67. Song H., Hur D.Y., Kim K.E., Park H., Kim T., Kim C.W., Bang S., Cho D.H. IL-2/IL-18 prevent the down-modulation of NKG2D by TGF-beta in NK cells via the c-Jun N-terminal kinase (JNK) pathway. Cell Immunol., 2006, Vol. 242, no. 1, pp. 39-45.

68. Spits H., Artis D., Colonna M., Diefenbach A., di Santo J.P., Eberl G., Koyasu S., Locksley R.M., McKenzie A.N., Mebius R.E., Powrie F., Vivier E. Innate lymphoid cells – a proposal for uniform nomenclature. Nat. Rev. Immunol., 2013, Vol. 13, no. 2, pp. 145-149.

69. Spits H., Bernink J.H., Lanier L. NK cells and type 1 innate lymphoid cells: partners in host defense. Nat. Immunol., 2016, Vol. 17, no. 7, pp. 758-764.

70. Spits H., Cupedo T. Innate lymphoid cells: emerging insights in development, lineage relationships, and function. Annu Rev. Immunol., 2012, Vol. 30, pp. 647-675.

71. Sun J.C., Madera S., Bezman N.A., Beilke J.N., Kaplan M.H., Lanier L.L. Proinflammatory cytokine signaling required for the generation of natural killer cell memory. J. Exp. Med., 2012, Vol. 209, no. 5, pp. 947-954.

72. Tait Wojno E.D., Artis D. Innate lymphoid cells: balancing immunity, inflammation, and tissue repair in the intestine. Cell Host Microbe, 2012, Vol. 12, no. 4, pp. 445-457.

73. Tanriver Y., Diefenbach A. Transcription factors controlling development and function of innate lymphoid cells. Int. Immunol., 2014, Vol. 26, no. 3, pp. 119-128.

74. Tayade C., Fang Y., Black G.P., V A.P., Jr., Erlebacher A., Croy B.A. Differential transcription of Eomes and T-bet during maturation of mouse uterine natural killer cells. J. Leukoc. Biol., 2005, Vol. 78, no. 6, pp. 1347-1355.

75. Townsend M.J., Weinmann A.S., Matsuda J.L., Salomon R., Farnham P.J., Biron C.A., Gapin L., Glimcher L.H. T-bet regulates the terminal maturation and homeostasis of NK and Valpha14i NKT cells.Immunity, 2004, Vol. 20, no. 4, pp. 477-494.

76. Trotta R., Dal Col J., Yu J., Ciarlariello D., Thomas B., Zhang X., Allard J., 2 nd , Wei M., Mao H., Byrd J.C., Perrotti D., Caligiuri M.A. TGF-beta utilizes SMAD3 to inhibit CD16-mediated IFN-gamma production and antibody-dependent cellular cytotoxicity in human NK cells. J. Immunol., 2008, Vol. 181, no. 6, pp. 3784-3792.

77. Urlaub D., Bhat R., Messmer B., Watzl C. Co-activation of cultured human natural killer cells: enhanced function and decreased inhibition. J. Toxicol. Environ Health A, 2016, Vol. 79, no. 22-23, pp. 1078-1084.

78. Vacca P., Vitale C., Montaldo E., Conte R., Cantoni C., Fulcheri E., Darretta V., Moretta L., Mingari M.C. CD34+ hematopoietic precursors are present in human decidua and differentiate into natural killer cells upon interaction with stromal cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2011, Vol. 108, no. 6, pp. 2402-2407.

79. van de Walle I., Dolens A.C., Durinck K., de Mulder K., van Loocke W., Damle S., Waegemans E., de Medts J., Velghe I., de Smedt M., Vandekerckhove B., Kerre T., Plum J., Leclercq G., Rothenberg E.V., van Vlierberghe P., Speleman F., Taghon T. GATA3 induces human T-cell commitment by restraining Notch activity and repressing NK-cell fate. Nat. Commun., 2016, Vol. 7, 11171. doi: 10.1038/ncomms11171.

80. van Helden M.J., Goossens S., Daussy C., Mathieu A.L., Faure F., Marcais A., Vandamme N., Farla N., Mayol K., Viel S., Degouve S., Debien E., Seuntjens E., Conidi A., Chaix J., Mangeot P., de Bernard S., Buffat L., Haigh J.J., Huylebroeck D., Lambrecht B.N., Berx G., Walzer T. Terminal NK cell maturation is controlled by concerted actions of T-bet and Zeb2 and is essential for melanoma rejection. J. Exp. Med., 2015, Vol. 212, no. 12, pp. 2015-2025.

81. Vargas-Hernandez A., Mace E.M., Zimmerman O., Zerbe C.S., Freeman A.F., Rosenzweig S., Leiding J.W., Torgerson T., Altman M.C., Schussler E., Cunningham-Rundles C., Chinn I.K., Carisey A.F., Hanson I.C., Rider N.L., Holland S.M., Orange J.S., Forbes L.R. Ruxolitinib partially reverses functional NK cell deficiency in patients with STAT1 gain-of-function mutations. J. Allergy Clin. Immunol., 2018, Vol. 141, no. 6, pp. 2142-2155.

82. Viel S., Marcais A., Guimaraes F.S., Loftus R., Rabilloud J., Grau M., Degouve S., Djebali S., Sanlaville A., Charrier E., Bienvenu J., Marie J.C., Caux C., Marvel J., Town L., Huntington N.D., Bartholin L., Finlay D., Smyth M.J., Walzer T. TGF-beta inhibits the activation and functions of NK cells by repressing the mTOR pathway. Sci. Signal., 2016, Vol. 9, no. 415, ra19. doi: 10.1126/scisignal.aad1884.

83. Vong Q.P., Leung W.H., Houston J., Li Y., Rooney B., Holladay M., Oostendorp R.A., Leung W. TOX2 regulates human natural killer cell development by controlling T-BET expression. Blood, 2014, Vol. 124, no. 26, pp. 3905-3913.

84. Wagner J.A., Rosario M., Romee R., Berrien-Elliott M.M., Schneider S.E., Leong J.W., Sullivan R.P., Jewell B.A., Becker-Hapak M., Schappe T., Abdel-Latif S., Ireland A.R., Jaishankar D., King J.A., Vij R., Clement D., Goodridge J., Malmberg K.J., Wong H.C., Fehniger T.A. CD56bright NK cells exhibit potent antitumor responses following IL-15 priming. J. Clin. Invest., 2017, Vol. 127, no. 11, pp. 4042-4058.

85. Wang K.S., Ritz J., Frank D.A. IL-2 induces STAT4 activation in primary NK cells and NK cell lines, but not in T cells.J. Immunol., 1999, Vol. 162, no. 1, pp. 299-304.

86. Wang S., Xia P., Huang G., Zhu P., Liu J., Ye B., Du Y., Fan Z. FoxO1-mediated autophagy is required for NK cell development and innate immunity. Nat. Commun., 2016, Vol. 7, 11023. doi: 10.1038/ncomms11023.

87. Yamamoto K., Shibata F., Miyasaka N., Miura O. The human perforin gene is a direct target of STAT4 activated by IL-12 in NK cells. Biochem. Biophys. Res. Commun., 2002, Vol. 297, no. 5, pp. 1245-1252.

88. Yang B., Liu H., Shi W., Wang Z., Sun S., Zhang G., Hu Y., Liu T., Jiao S. Blocking transforming growth factor-beta signaling pathway augments antitumor effect of adoptive NK-92 cell therapy. Int. Immunopharmacol., 2013, Vol. 17, no. 2, pp. 198-204.

89. Yokota Y., Mansouri A., Mori S., Sugawara S., Adachi S., Nishikawa S., Gruss P. Development of peripheral lymphoid organs and natural killer cells depends on the helix-loop-helix inhibitor Id2.Nature, 1999, Vol. 397, no. 6721, pp. 702-706.

90. Yu T.K., Caudell E.G., Smid C., Grimm E.A. IL-2 activation of NK cells: involvement of MKK1/2/ERK but not p38 kinase pathway. J. Immunol., 2000, Vol. 164, no. 12, pp. 6244-6251.


Для цитирования:


Михайлова В.А., Баженов Д.О., Белякова К.Л., Сельков С.А., Соколов Д.И. ДИФФЕРЕНЦИРОВКА NK-КЛЕТОК. ВЗГЛЯД ЧЕРЕЗ ПРИЗМУ ТРАНСКРИПЦИОННЫХ ФАКТОРОВ И ВНУТРИКЛЕТОЧНЫХ МЕССЕНДЖЕРОВ. Медицинская иммунология. 2019;21(1):21-38. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-1-21-38

For citation:


Mikhailova V.A., Bazhenov D.O., Belyakova K.L., Selkov S.A., Sokolov D.I. DIFFERENTIATION OF NK CELLS. A LOOK THROUGH THE PRISM OF TRANSCRIPTION FACTORS AND INTRACELLULAR MESSENGERS. Medical Immunology (Russia). 2019;21(1):21-38. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-1-21-38

Просмотров: 287


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1563-0625 (Print)
ISSN 2313-741X (Online)