Preview

Медицинская иммунология

Расширенный поиск

ЗАВИСИМОЕ ОТ ЛЕКТИНОВ РАЗНООБРАЗИЕ ПОПУЛЯЦИЙ ПРИРОДНЫХ КИЛЛЕРНЫХ КЛЕТОК В КОММУНИКАЦИЯХ ПРОТИВ ОПУХОЛЕЙ И ВИРУСОВ

https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-595-602

Полный текст:

Аннотация

Популяции природных киллерных клеток человека (ППККЧ) против опухолей в присутствии вирусов оценены как сильно варьирующие и рано адаптированные к патологическим сигналам в организме мобильные и избирательно действующие способные к комбинированию агенты. ППККЧ осуществляют различные действия в результате кофункционирования рецепторных лектинов (РЛ), распознающих гликопаттерны (РЛ как триггеры, инициаторы и базисные агенты для надстроечных реакций), и Ig-подобных, цитотоксических и прочих вспомогательных коммуникативных и эффекторных рецепторов (роль РЛ как инструментов тонкой настройки мозаики поверхностноклеточных рецепторов в направлении необходимой функциональной ориентации ППККЧ), а также их лигандов (модуляторов созданных конечных рецепторных мозаик). Такие наученные и переобученные ППККЧ играют важную роль в перераспределении ППККЧ-индуцированных паротиворопухолевых и антивирусных цитокиновых наборов в организме. Межклеточный коммуникативный потенциал ППККЧ также учитывает другие клетки врожденного иммунитета и адаптированные для врожденного иммунитета клетки, что может служить перспективным и универсальным ресурсом защиты человека. ППККЧ должны учитываться при разработке товых маневренных и надежных сбалансированных профилактических и иммунотерапевтических противоопухолевых/ антивирусных систем и вакцинных стратегий. Открыты пути к алгоритмам тонкой настройки (РЛ—KIR/ NCR/ CD/ их комбинации)  РЛ-базисного конструирования веера противоопухолевых/ антивирусных ППККЧ с дальнейшим потенциалом инициирования. Ключевую важность приобретает скрининг спектра ППККЧ у индивидуума и потенциального пациента для дополнительной оценки защитного статуса и выработки персонизированных коммуникативных противоопухолевых/ антивирусных стратегий. Установленный статус NK(natural killers)-компартмента будет характеризовать резистентность индивидуума/ контингента индивидуумов против вирусных инфекаций эпидемиологической значимости, играть важную роль при оценке противоэпидемической защиты региона.

 

Об авторах

М. В. Лахтин
ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора
Россия

к.б.н., старший научный сотрудник

125212, Россия, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

+7 (495) 452-18-16



В. М. Лахтин
ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора
Россия
д.б.н., главный научный сотрудник


В. А. Алешкин
ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора
Россия
д.б.н., профессор, научный руководитель


С. С. Афанасьев
ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора
Россия

д.м.н., профессор, главный научный сотрудник 



Список литературы

1. Лахтин М.В., Лахтин В.М., Алёшкин В.А., Афанасьев М.С., Афанасьев С.С. Лектины в антираковых стратегиях // Acta Biomedica Scientifica. - 2018. - Т. 3(4). - С. 69-77. doi: 10.29413/ABS.2018-3.4.11

2. Лахтин М.В., Лахтин В.М., Алёшкин В.А., Афанасьев С.С. Лектиновые рецепторы в коммуникациях // News of science and education. – 2018.- Том 2, № 3. – C. 76-98. URL: https://elibrary.ru/contents.asp?id=34830407

3. Лахтин М.В., Лахтин В.М., Афанасьев С.С., Байракова А.Л., Алёшкин В.А., Афанасьев М.С. Кандидные маркеры болезней урогенитальных биотопов: реактивность к лектинам пробиотиков//Acta Biomedica Scientifica, 2018. Т. 3 (1). С. 49-53. doi: 10.29413/ ABS.2018-3.1.7 3

4. Bigley A. B., Rezvani K., Shah N., Sekine T., Balneger N., Pistillo M., Agha N., Kunz H., O'Connor D.P., Bollard C.M., Simpson R.J. Latent cytomegalovirus infection enhances anti-tumour cytotoxicity through accumulation of NKG2C+ NK cells in healthy humans. Clin. Exp. Immunol., 2016, Vol. 185(2), pp. 239-25. doi: 10.1111/cei.12785.

5. do Carmo F.L.R., Rabah H., De Oliveira Carvalho R.D., Gaucher F., Cordeiro B.F., da Silva S.H., Le Loir Y., Azevedo V., Jan G. Extractable Bacterial Surface Proteins in Probiotic-Host Interaction. Front. Microbiol., 2018 Apr 4;9:645. doi: 10.3389/fmicb.2018.00645.

6. Chijioke O., Landtwing V., Münz C. NK cell influence on the outcome of primary Epstein-Barr virus infection. Front. Immunol., 2016 Aug 29;7:323. doi: 10.3389/fimmu.2016.00323.

7. Crane C.A., Austgen K., Haberthur K., Hofmann C., Moyes K. W., Avanesyan L., Fong L., Campbell M.J., Cooper S., Oakes S.A., Parsa A.T., Lanier L.L. Immune evasion mediated by tumor-derived lactate dehydrogenase induction of NKG2D ligands on myeloid cells in glioblastoma patients. Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, Vol. 111(35), pp. 12823-12828. doi: 10.1073/pnas.1413933111

8. Djaoud Z., Guethlein L. A., Horowitz A., Azzi T., Nemat-Gorgani N., Olive D., Nadal D., Norman P.J., Münz C., Parham P. Two alternate strategies for innate immunity to Epstein-Barr virus: One using NK cells and the other NK cells and gamma-delta T cells. J. Exp. Med., 2017, Vol. 214(6), pp. 1827-1841. doi: 10.1084/jem.20161017

9. Djaoud Z., Riou R., Gavlovsky P.J., Mehlal S., Bressollette C., Gérard N., Gagne K, Charreau B, Retière C. Cytomegalovirus-infected primary endothelial cells trigger NKG2C+ natural killer cells. J. Innate Immun., 2016, Vol. 8(4), pp. 374-385. doi: 10.1159/000445320

10. Dukovska D., Fernández-Soto D., Valés-Gómez M., Reyburn H. T. NKG2H-expressing T cells negatively regulate immune responses. Front. Immunol., 2018 Mar 1;9:390. doi: 10.3389/fimmu.2018.00390

11. Espinoza J.L., Minami M. Sensing bacterial-induced DNA damaging effects via natural killer group 2 member D immune receptor: From dysbiosis to autoimmunity and carcinogenesis. Front. Immunol., 2018 Jan 25;9:52. doi: 10.3389/fimmu.2018.00052

12. Espinoza J.L., Nguyen V.H., Ichimura H., Pham T.T., Nguyen C.H., Pham T.V., Elbadry M.I., Yoshioka K., Tanaka J., Trung L.Q.,Takami A., Nakao S. A functional polymorphism in the NKG2D gene modulates NK-cell cytotoxicity and is associated with susceptibility to Human Papilloma Virus-related cancers. Sci. Rep., 2016 Dec 20;6:39231. doi: 10.1038/srep39231

13. Fehniger T.A., Cooper M.A. Harnessing NK cell memory for cancer immunotherapy. Trends Immunol., 2016, Vol. 37(12), pp. 877-888. doi: 10.1016/j.it.2016.09.005

14. Georgountzou A., Papadopoulos N.G. Postnatal innate immune development: From birth to adulthood. Front. Immunol., 2017;8:957. doi: 10.3389/fimmu.2017.00957

15. Grandi N., Cadeddu M., Pisano M.P., Esposito F., Blomberg J., Tramontano E. Identification of a novel HERV-K(HML10): Comprehensive characterization and comparative analysis in non-human primates provide insights about HML10 proviruses structure and diffusion. Mob. DNA, 2017 Nov 2;8:15. doi: 10.1186/s13100-017-0099-7

16. Hatfield S.D., Daniels K.A., O'Donnell C.L., Waggoner S.N., Welsh R.M. Weak vaccinia virus-induced NK cell regulation of CD4 T cells is associated with reduced NK cell differentiation and cytolytic activity. Virology, 2018, Vol. 519, pp. 131-144. doi: 10.1016/j.virol.2018.04.012

17. Heiberg I.L., Pallett L.J., Winther T.N., Høgh B., Maini M.K., Peppa D. Defective natural killer cell anti-viral capacity in paediatric HBV infection. Clin. Exp. Immunol., 2015, Vol. 179(3), pp. 466-476. doi: 10.1111/cei.12470

18. Janelle V., Langlois M.P., Tarrab E., Lapierre P., Poliquin L., Lamarre A. Transient complement inhibition promotes a tumor-specific immune response through the implication of natural killer cells. Cancer Immunol. Res., 2014, Vol. 2(3), pp. 200-206. doi: 10.1158/2326-6066.CIR-13-0173

19. Jud A., Kotur M., Berger C., Gysin C., Nadal D., Lünemann A. Tonsillar CD56brightNKG2A+ NK cells restrict primary Epstein-Barr virus infection in B cells via IFN-gamma. Oncotarget, 2017, Vol. 8(4), pp. 6130-6141. doi: 10.18632/oncotarget.14045

20. Keydar Y., Le Saux G., Pandey A., Avishay E., Bar-Hanin N., Esti T., Bhingardive V., Hadad U., Porgador A., Schvartzman M. Natural killer cells' immune response requires a minimal nanoscale distribution of activating antigens. Nanoscale. 2018, Vol. 10 (30), pp. 14651-14659. doi: 10.1039/c8nr04038a

21. Koltan S., Debski R., Koltan A., Grzesk E., Tejza B., Eljaszewicz A., Gackowska L., Kubicka M., Kolodziej B., Kurylo-Rafinska B.,Kubiszewska I., Wiese M., Januszewska M., Michalkiewicz J., Wysocki M., Styczynski J., Grzesk G. Phenotype of NK cells determined on the basis of selected immunological parameters in children treated due to acute lymphoblastic leukemia. Medicine (Baltimore), 2015 Dec;94(52):e2369. doi: 10.1097/MD.0000000000002369

22. Kurioka A., Cosgrove C., Simoni Y., van Wilgenburg B., Geremia A., Björkander S., Sverremark-Ekström E., Thurnheer C.,Günthard H.F., Khanna N., Walker L.J., Arancibia-Cárcamo C.V., Newell E.W., Willberg C.B., Klenerman P. CD161 Defines a Functionally Distinct Subset of Pro-Inflammatory Natural Killer Cells. Front. Immunol., 2018 Apr 9;9:486. doi: 10.3389/fimmu.2018.00486

23. Kurioka A., Klenerman P., Willberg C. B. Innate-like CD8+ T-cells and NK cells: converging functions and phenotypes. Immunology., 2018 Mar 14. doi: 10.1111/imm.12925

24. Mahapatra S., Mace E.M., Minard C.G., Forbes L.R., Vargas-Hernandez A., Duryea T.K., Makedonas G., Banerjee P.P.,Shearer W.T., Orange J.S. High-resolution phenotyping identifies NK cell subsets that distinguish healthy children from adults. PLoS One. 2017 Aug 2;12(8):e0181134.doi: 10.1371/journal.pone.0181134

25. Mahaweni N.M., Ehlers F.A.I., Sarkar S., Janssen J.W.H., Tilanus M.G.J., Bos G.M.J., Wieten L. NKG2A Expression Is Not per se Detrimental for the Anti-Multiple Myeloma Activity of Activated Natural Killer Cells in an In Vitro System Mimicking the Tumor Microenvironment. Front. Immunol., 2018 Jun 22;9:1415. doi: 10.3389/fimmu.2018.01415

26. Malone D.F.G., Lunemann S., Hengst J., Ljunggren H.G., Manns M. P., Sandberg J.K., Cornberg M., Wedemeyer H., Björkström N.K. Cytomegalovirus-driven adaptive-like natural killer cell expansions are unaffected by concurrent chronic hepatitis virus infections. Front. Immunol., 2017 May 8;8:525. doi: 10.3389/fimmu.2017.00525

27. Marrufo A.M., Mathew S.O., Chaudhary P., Malaer J.D., Vishwanatha J.K., Mathew P.A. Blocking LLT1 (CLEC2D, OCIL)-NKRP1A (CD161) interaction enhances natural killer cell-mediated lysis of triple-negative breast cancer cells. Am. J. Cancer Res., 2018, Vol. 8(6), pp. 1050-1063. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/30034942/ [PMCID: PMC6048397]

28. Martinez D.R., Permar S.R., Fouda G.G. Contrasting adult and infant immune responses to HIV infection and vaccination. Clin.Vaccine Immunol., 2015, Vol. 23(2), pp. 84-94. doi: 10.1128/CVI.00565-15

29. Mavers M., Bertaina A. High-Risk Leukemia: Past, Present, and Future Role of NK Cells. J. Immunol. Res., 2018 Apr 15;2018:1586905. doi: 10.1155/2018/1586905

30. Muntasell A., Vilches C. Angulo A. López-Botet M. Adaptive reconfiguration of the human NK-cell compartment in response to cytomegalovirus: A different perspective of the host-pathogen interaction. Eur.J.Immunol., 2013, Vol. 43(5), pp. 1133-1141. doi: 10.1002/eji.201243117

31. Münz C. Epstein-Barr virus-specific immune control by innate lymphocytes. Front. Immunol., 2017 Nov 24;8:1658. doi: 10.3389/fimmu.2017.01658

32. Muta T., Yoshihiro T., Jinnouchi F., Aoki K., Kochi Y., Shima T., Takenaka K., Ogawa R., Akashi K., Oshima K. Expansion of NKG2C-expressing natural killer cells after umbilical cord blood transplantation in a patient with peripheral T-cell lymphoma with cytotoxic molecules. Intern. Med., 2018, Vol. 57(6), pp. 861-866. doi: 10.2169/internalmedicine.9437-17

33. Peled J.U., Jenq R.R. Not just leukemia: CMV may protect against lymphoma recurrence after allogeneic transplant. Leuk. Lymphoma, 2017, Vol. 58(4), pp. 759-761. doi: 10.1080/10428194.2016.1239265

34. Peppa D. Natural killer cells in human immunodeficiency virus-1 infection: spotlight on the impact of human cytomegalovirus. Front. Immunol., 2017 Oct 17;8:1322. doi: 10.3389/fimmu.2017.01322

35. Phan M.T., Chun S., Kim S.H., Ali A.K., Lee S.H., Kim S., Kim S.H., Cho D. Natural killer cell subsets and receptor expression in peripheral blood mononuclear cells of a healthy Korean population: Reference range, influence of age and sex, and correlation between NK cell receptors and cytotoxicity. Hum. Immunol., 2017, Vol. 78(2), pp. 103-112. doi: 10.1016/j.humimm.2016.11.006

36. Prado Acosta M., Ruzal S.M., Cordo S.M. S-layer proteins from Lactobacillus sp. inhibit bacterial infection by blockage of DC-SIGN cell receptor. Int. J. Biol. Macromol., 2016 Nov;92:998-1005. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2016.07.096

37. Przemska-Kosicka A., Childs C. E., Maidens C., Dong H., Todd S., Gosney M.A., Tuohy K.M., Yaqoob P. Age-Related Changes in the Natural Killer Cell Response to Seasonal Influenza Vaccination Are Not Influenced by a Synbiotic: a Randomised Controlled Trial. Front. Immunol., 2018 Mar 22;9:591. doi: 10.3389/fimmu.2018.00591

38. Pupuleku A., Costa-García M., Farré D., Hengel H., Angulo A., Muntasell A., López-Botet M. Elusive role of the CD94/NKG2C NK cell receptor in the response to cytomegalovirus: Novel experimental observations in a reporter cell system. Front. Immunol., 2017 Oct 24;8:1317. doi: 10.3389/fimmu.2017.01317

39. Ramsuran V., Naranbhai V., Horowitz A., Qi Y., Martin M.P., Yuki Y., Gao X., Walker-Sperling V., Del Prete G.Q., Schneider D.K., Lifson J.D., Fellay J., Deeks S.G., Martin J.N., Goedert J.J., Wolinsky S.M., Michael N.L., Kirk G.D., Buchbinder S.,.Haas D., Ndung'u T., Goulder P., Parham P., Walker B.D., Carlson J.M., Carrington M. Elevated HLA-A expression impairs HIV control through inhibition of NKG2A-expressing cells. Science. 2018, Vol. 359 (6371), pp. 86-90. doi: 10.1126/science.aam8825

40. Ruggeri L., Urbani E., André P., Mancusi A., Tosti A., Topini F., Bléry M., Animobono L., Romagné F., Wagtmann N., Velardi A. Effects of anti-NKG2A antibody administration on leukemia and normal hematopoietic cells. Haematologica, 2016, Vol. 101(5), pp. 626-633. doi: 10.3324/haematol.2015.135301

41. Stojanovic A., Correia M.P., Cerwenka A. The NKG2D/NKG2DL axis in the crosstalk between lymphoid and myeloid cells in health and disease. Front. Immunol., 2018 Apr 23;9:827. doi: 10.3389/fimmu.2018.00827

42. Sundström Y., Nilsson C., Lilja G., Kärre K., Troye-Blomberg M., Berg L. The expression of human natural killer cell receptors in early life. Scand. J. Immunol., 2007, Vol. 66 (2-3), pp. 335-344. doi: 10.1111/j.1365-3083.2007.01980.x

43. Thompson T.W., Jackson B.T., Li P.J., Wang J., Kim A.B., Huang K.T.H., Zhang L., Raulet D.H. Tumor-derived CSF-1 induces the NKG2D ligand RAE-1-delta on tumor-infiltrating macrophages. Elife, 2018 May 14;7. pii: e32919. doi: 10.7554/eLife.32919

44. Uemura Y., Isobe Y., Uchida A., Asano J., Nishio Y., Sakai H., Hoshikawa M., Takagi M., Nakamura N., Miura I. Expression of activating natural killer-cell receptors is a hallmark of the innate-like T-cell neoplasm in peripheral T-cell lymphomas. Cancer Sci.. 2018; Vol. 109 (4), pp. 1254-1262. doi: 10.1111/cas.13512

45. Uppendahl L.D., Dahl C.M., Miller J.S., Felices M., Geller M.A. Natural killer cell-based immunotherapy in gynecologic malignancy: A review. Front. Immunol., 2018 Jan 5;8:1825. doi: 10.3389/fimmu.2017.01825

46. Walter L., Petersen B. Diversification of both KIR and NKG2 natural killer cell receptor genes in macaques - implications for highly complex MHC-dependent regulation of natural killer cells. Immunology, 2017, Vol. 150(2), pp. 139-145. doi: 10.1111/imm.12666

47. Wang Z., Guo L., Song Y., Zhang Y., Lin D., Hu B., Mei Y., Sandikin D., Liu H. Augmented anti-tumor activity of NK-92 cells expressing chimeric receptors of TGF-beta-R II and NKG2D. Cancer Immunol. Immunother., 2017, Vol. 66(4), pp. 537-548. doi: 10.1007/s00262-017-1959-1

48. Wensveen F.M., Jelenčić V., Polić B. NKG2D: A Master Regulator of Immune Cell Responsiveness. Front Immunol., 2018 Mar 8;9:441. doi: 10.3389/fimmu.2018.00441

49. Zingoni A., Molfetta R., Fionda C., Soriani A., Paolini R., Cippitelli M., Cerboni C, Santoni A. NKG2D and its ligands: "One for all, all for one". Front. Immunol., 2018 Mar 12;9:476. doi: 10.3389/fimmu.2018.00476


Для цитирования:


Лахтин М.В., Лахтин В.М., Алешкин В.А., Афанасьев С.С. ЗАВИСИМОЕ ОТ ЛЕКТИНОВ РАЗНООБРАЗИЕ ПОПУЛЯЦИЙ ПРИРОДНЫХ КИЛЛЕРНЫХ КЛЕТОК В КОММУНИКАЦИЯХ ПРОТИВ ОПУХОЛЕЙ И ВИРУСОВ. Медицинская иммунология. 2019;21(4):595-602. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-595-602

For citation:


Lakhtin M.V., Lakhtin V.M., Aleshkin V.A., Afanasiev S.S. LECTIN-DEPENDENT DIVERSITY OF NATURAL KILLER POPULATIONS AND COMMUNICATIONS AGAINST TUMORS AND VIRUSES. Medical Immunology (Russia). 2019;21(4):595-602. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-4-595-602

Просмотров: 111


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1563-0625 (Print)
ISSN 2313-741X (Online)