ТРИПТАЗА РОТОВОЙ ЖИДКОСТИ И IgE-АНТИТЕЛА КАК МАРКЕР АЛЛЕРГИЧЕСКОГО ВОСПАЛЕНИЯ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПОЛОСТИ РТА

Целью исследования явилось определение концентрации триптазы тучных клеток (ТТК) в ротовой жидкости (РЖ) и IgE-антител в крови у пациентов с симптомами непереносимости стоматологических материалов (НСМ) до и после удаления причинных ортопедических конструкций. Проведено обследование пациентов, обратившихся с жалобами на НСМ, которые были разделены на 2 группы в зависимости от временного интервала между окончанием зубопротезирования и появлением патологических симптомов: 1 группа (n = 19) – от 1 до 14 суток (возникновение симптомов отмечалось сразу после протезирования, а в последующем они нарастали); 2 группа (n = 18) – от полугода до 5 лет; 3 группа (n = 16) – контрольная – без жалоб на НСМ. Образцы ротовой жидкости (РЖ) для измерения ТТК собирались у пациентов до снятия причинных ортопедических конструкций и через месяц после снятия. В группе пациентов с НСМ и возникновением симптомов НСМ на 1-е – 14-е сутки после протезирования ТТК в РЖ выявлялась у 16 (84,2%) пациентов до снятия причинных ортопедических конструкций, а через месяц после снятия ортопедических конструкций ТТК в РЖ не определялась (р ≤ 0,001). У пациентов контрольной группы ТТК в РЖ не определялась до и после снятия ортопедических конструкций. Таким образом, ТТК в РЖ является диагностическим маркером алергии на КСМ. У пациентов с возникновением симптомов НСМ на 1-е – 14-е сутки после протезирования выявлены IgE-антитела к: Ni-HSA – у 78,9% пациентов, Cr-HSA – у 68,4% пациентов, Co-HSA – у 52,6% пациентов. Уровень ТТК в РЖ сильно коррелировал с уровнем IgE-антител к NiHSA (R_Spearman = 0,9; р < 0,05) и Cr-HSA – умеренно (R_Spearman = 0,7; р < 0,05). Полученные данные указывают на превалирование немедленного типа реакции на КСМ. Выраженное локальное повышение уровня ТТК представляет собой важный патогенетический маркер местной инициации воспалительного процесса в полости рта. ТТК в РЖ выявлена только у 3 (16,7%) пациентов с возникновением симптомов НСМ от полугода до 5 лет (n = 18), и у них же IgE-антитела к металлам в сыворотке крови, что указывает на IgE-зависимый характер реакции у них. У остальных пациентов 2 группы, по-видимому, имеется иной тип аллергической реакции – замедленный, или гранулоцитопосредо- ванный. Для достоверной диагностики аллергии на компоненты стоматологических материалов целесообразно измерение ТТК в РЖ до и после снятия ортопедических конструкций. Мониторинг уровня ТТК в РЖ позволяет оценить причинность ортопедических конструкций в возникновении НСМ и необходимость замены их замены. 

1. Карпук Н.А., Карпук И.Ю. Диагностика аллергии на металлические изделия в реакции аллергениндуцированного повреждения лейкоцитов // Медицинские новости, 2012. № 6. С. 75-76. [Karpuk N.A., Karpuk I.Yu. Diagnosis of allergy to metal products in the reaction of allergenic-induced leukocyte damage. Meditsinskie novosti = Medical News, 2012, no. 6, pp. 75-76. (In Russ.)]

2. Новиков Д.К., Новиков П.Д. Клиническая иммунопатология: руководство. М.: Медицинская литература, 2009. 464 с. [Novikov D.K., Novikov P.D. Clinical immunopathology: a guide]. Moscow: Medical Literature, 2009. 464 p.

3. Новиков Д.К., Сергеев Ю.В., Новиков П.Д. Лекарственная аллергия. М.: Национальная академия микологии, 2001. 313 с. [Novikov D.K., Sergeev Yu.V., Novikov P.D. Medicinal allergy]. Moscow: National Academy of Mycology, 2001. 313 p. (In Russ.)]

4. Новиков П.Д., Новиков Д.К., Титова Н.Д. Диагностика аллергии и гиперчувствительности: ведущее значение клеточных методов // Иммунопатология, аллергология, инфектология, 2016. № 4. С. 25-39. [Novikov P.D., Novikov D.K., Titova N.D. Diagnosis of allergy and hypersensitivity: the leading importance of cellular methods. Immunopatologiya, allergologiya, infektologiya = Immunopathology, Allergology, Infectology, 2016, no. 4, pp. 25-39. (In Russ.)]

5. Blank U. The mechanisms of exocytosis in mast cells. Adv. Exp. Med. Biol., 2011, Vol. 716, pp. 107-122.

6. Chen S., Mu D., Cui M., Ren C., Zhang S., Guo L., Gao W. Dynamic changes and clinical significance of serum tryptase levels in STEMI patients treated with primary PCI. Biomarkers, 2014, Vol. 19, no. 7, pp. 620-624.

7. Jogie-Brahim S., Min H.K., Fukuoka Y., Xia H.Z., Schwartz L.B. Expression of alpha-tryptase and beta-tryptase by human basophils. J. Allergy Clin. Immunol., 2004, Vol. 113, no. 6, pp. 1086-1092.

8. Kumar V., Sharma A. Mast cells: emerging sentinel innate immune cells with diverse role in immunity. Mol. Immunol., 2010, Vol. 48, no. 1-3, pp. 14-25.

9. Lorentz A., Baumann A., Vitte J., Blank U. The SNARE machinery in mast cell secretion. Front. Immunol., 2012, Vol. 3, p. 143.

10. Lundequist A., Pejler G. Biological implications of preformed mast cell mediators. Cell. Mol. Life Sci., 2011, Vol. 68, no. 6, pp. 965-975.

11. Niedoszytko M., Chełmińska M., Chełmiński K., Knopińska-Posłuszny W., Gruchała-Niedoszytko M., Jassem E. Late-phase allergic reaction in nasal provocation with fungal allergens. Allergy Asthma Proc., 2008, Vol. 29, no. 1, pp. 35-39.

12. Ruëff F., Friedl T., Arnold A., Kramer M., Przybilla B. Release of mast cell tryptase into saliva: a tool to diagnose food allergy by a mucosal challenge test? Int. Arch. Allergy Immunol., 2011, Vol. 155, no. 3, pp. 282-288.

13. Sargur R., Cowley D., Murng S., Wild G., Green K., Shrimpton A., Egner W. Raised tryptase without anaphylaxis or mastocytosis: heterophilic antibody interference in the serum tryptase assay. Clin. Exp. Immunol., 2011, Vol. 163, no. 339-345.

14. Schliemann S., Seyfarth F., Hipler U.C., Elsner P. Impact of age and heterophilic interference on basal serum tryptase, a risk indication for anaphylaxis, in 1092 dermatology patients. Acta Derm. Venereol., 2012, Vol. 92, no. 5, pp. 484-489.

15. St. John A.L., Abraham S.N. Innate immunity and its regulation by mast cells. J. Immunol., 2013, Vol. 190, no. 9, pp. 4458-4463.

16. Trivedi N.N., Caughey G.G. Mast cell peptidases. Chameleons ofinnate immunity and host defense. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol., 2010, Vol. 42, no. 3, pp. 257-267.

17. Valent P. Mast cell activation syndromes: definition and classification. Allergy, 2013, Vol. 68, no. 4, pp. 417-424.

18. Valent P., Akin C., Arock M., Brockow K., Butterfield J.H., Carter M.C., Castells M., Escribano L., Hartmann K., Lieberman P., Nedoszytko B., Orfao A., Schwartz L.B., Sotlar K., Sperr W.R., Triggiani M., Valenta R., Horny H.P., Metcalfe D.D. Definitions, criteria and global classi- fications of mast cell disorders with special reference to mast cell activation syndromes: a consensus proposal. Int. Arch. Allergy Clin. Immunol., 2012, Vol. 157, no. 3, pp. 215-225.

19. Vitte J. Human mast cell tryptase in biology and medicine. Mol. Immunol., 2015, Vol. 63, no. 1, pp. 18-24.

20. Voehringer D. Protective and pathological roles of mast cells and basophils. Nat. Rev. Immunol., 2013, Vol. 13, pp. 362-375.