Особенности гистотопографии лимфоцитов и клеток стромы с высоким уровнем гликозилирования в лимфатических узлах пациентов с В-хроническим лимфолейкозом

Малигнизация лимфопоэза в лимфатических узлах (ЛУ) сопровождается структурной перестройкой лимфатических узлов и изменением характера гликозилирования мембранных и цитоплазматических белков. Для гистохимического выявления трансформирующихся лимфоидных клеток и ремоделируемой стромы лимфоузлов мы использовали лектин томата Lycopersicon esculentum, который способен связываться с поверхностными и цитоплазматическими гликопротеинами большинства клеточных элементов ЛУ. Целью исследования стало изучение особенностей архитектоники клеток с высоким уровнем гликозилирования белков в ЛУ пациентов с B-хроническим лимфолейкозом (В-ХЛЛ). Материалом исследования послужили биоптаты надключичных и шейных ЛУ пациентов БУЗ УР «Первая республиканская клиническая больница МЗ УР» с верифицированным диагнозом «В-ХЛЛ» (16 пациентов) в возрасте 49-73 лет, полученные до начала лечения, с их информированного добровольного согласия. Контрольными образцами послужили биоптаты ЛУ из этих же областей организма 12 лиц в возрасте 48-70 лет с реактивной гиперплазией лимфатических узлов. Парафиновые срезы ЛУ толщиной 7 мкм окрашивали с помощью ФИТЦ-конъюгированного ЛТ и флуоресцентного красителя йодид пропидия (ИП) и исследовали в микроскопе Nikon Eclipse Е200, оснащенном люминесцентным блоком и цифровым фотоаппаратом. Анализ препаратов лимфатических узлов пациентов с В-ХЛЛ свидетельствовал о значительных изменениях в гистотопографии клеток и внеклеточных структур с высоким уровнем гликозилирования. В частности, в кортикальном веществе фолликулы замещались массивом из малых лимфоцитов, на фоне которых выявлялись центры пролиферации с лимфоцитами с дисперсной упаковкой ИП-меченного хроматина. В этой области мы также наблюдали равномерную сеть из тонких ЛТ-меченых ретикулярных волокон и большое количество кровеносных сосудов малого калибра. Макрофагподобные клетки, отчетливо идентифицируемые в ЦР фолликулов контрольных ЛУ, отсутствовали у пациентов с В-ХЛЛ. Однако отмечалось их повышенное число и интенсивность люминесцентного свечения относительно контроля в области, примыкающей к субкапсулярному синусу и в паракортикальной области вокруг коллагеновых тяжей, образующихся на основе кондуитов, а также вокруг соединительнотканных трабекул мозгового вещества. Обнаруженные отличия гистотопографии клеток ЛУ с высоким уровнем гликозилирования при В-ХЛЛ позволяют рассматривать предлагаемый способ окрашивания как информативный и облегчающий диагностирование этого заболевания при гистологическом исследовании.

1. Blöchl C., Wang D., Mayboroda O.A., Lageveen-Kammeijer G.S.M., Wuhrer M. Transcriptionally imprinted glycomic signatures of acute myeloid leukemia. Cell Biosci., 2023, Vol. 13, no. 1, 31. doi: 10.1186/s13578-023-00981-0.

2. Cerreto M., Foà R., Natoni A. The role of the microenvironment and cell adhesion molecules in chronic lymphocytic leukemia. Cancers (Basel), 2023, Vol. 15, no. 21, 5160. doi: 10.3390/cancers15215160.

3. Chaves Filho A.J.M., Jucá P.M., Soares M.V.R., de Oliveira C.A., de Sousa R.C., Lós D.B., Russo R.C., Yaochite J.N.U., Macedo D.S. In vitro immunogenic profile of recombinant SARS-CoV2 S1-RBD peptide in murine macrophage and microglial cells. Mem. Inst. Oswaldo Cruz., 2023, Vol. 118, e220144. doi: 10.1590/0074-02760220144.

4. de Sousa G.F., Lund R.G., da Silva Pinto L. The Role of plant lectins in the cellular and molecular processes of skin wound repair: an overview. Curr. Pharm. Des., 2023, Vol. 29, no. 33, pp. 2618-2625.

5. Godinho-Pereira J., Vaz D., Figueira I., Aniceto-Romão J., Krizbai I., Malhó R., Rocha J., Carvalheiro M.C., Simões S., Gaspar M.M., Brito M.A. Breast cancer brain metastases: implementation and characterization of a mouse model relying on malignant cells inoculation in the carotid artery. Cells., 2023, Vol. 12, no. 16, 2076. doi: 10.3390/cells12162076.

6. Jiao C., Adler K., Liu X., Sun W., Mullins R.F., Sohn E.H. Visualization of mouse choroidal and retinal vasculature using fluorescent tomato lectin perfusion. Transl. Vis. Sci. Technol., 2020, Vol. 9, no. 1, 1. doi: 10.1167/ tvst.9.1.1.

7. Reily C., Stewart T.J., Renfrow M.B., Novak J. Glycosylation in health and disease. Nat. Rev. Nephrol., 2019, Vol. 15, pp. 346-366.

8. Su H., Wang M., Pang X., Guan F., Li X., Cheng Y. When glycosylation meets blood cells: a glance of the aberrant glycosylation in hematological malignancies. Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol., 2021, Vol. 180, pp. 85-117.

9. Suzuki O. Glycosylation in lymphoma: Biology and glycotherapy. Pathol. Int., 2019, Vol. 69, no. 8, pp. 441-449.