Preview

Медицинская иммунология

Расширенный поиск

ИНТЕГРАЦИОННЫЙ ДИАГНОСТИЧЕСКИЙ КРИТЕРИЙ, ОЦЕНИВАЮЩИЙ ТЯЖЕСТЬ ТЕЧЕНИЯ COVID-19 И РИСК ВОЗНИКНОВЕНИЯ ПОСТКОВИДНОГО СИНДРОМА

https://doi.org/10.15789/1563-0625-IDC-2594

Полный текст:

Аннотация

Патофизиология тяжелой формы COVID-19 характеризуется изменением количества, фенотипа и функций нейтрофильных гранулоцитов (НГ). Среди эффекторных противовирусных механизмов НГ одними из наиболее важных являются нейтрофильные внеклеточные ловушки (NETs), но чрезмерное их образование усугубляет воспаление при остром респираторном дистресс-синдроме и способствует тромбозу микрососудов. Их обнаружение и количественная оценка могут иметь важное значение при различных формах течения COVID-19 для определения корреляции с исходом заболевания, оценки риска развития постковидного синдрома и, возможно, мониторинга будущей целевой терапии.

 Цель исследования: разработать новый диагностический интеграционный критерий, позволяющий оценить тяжесть течения COVID-19  и риск развития осложнений в постковидном периоде, в т.ч. постковидного синдрома в периферической крови.

Материалы и методы: Исследованы образцы периферической крови (ПК)  31 пациента  с острым течением COVID-19 (среднетяжелого течения (n=15) и тяжелого течения (n=16)), 52 пациентов, выписанных из стационара после лечения COVID-19 тяжелой степени тяжести, в сроки от 30 до 60 дней, имеющие постковидный синдром (ПКС) и 100 условно-здоровых добровольцев. Оценивались показатели общеклинического анализа крови (MicroCC-20Plus), в мазках ПК проводился подсчет лейкоцитарной формулы с учетом количества образованных NET и НГ, ушедших в патологический апоптоз. На основе полученных результатах рассчитывался интеграционный диагностический критерий по формуле: ИДК= .

Результаты. Показано снижение ИДК при среднетяжелом течении заболевания в 8,5 раз (p<0,05), а при тяжелом течении в 30 раз (p<0,05) по сравнению со значениями в группе условно-здоровых лиц. Также установлено, что у 88,5 % пациентов с ПКС перенесших SARS-CoV-2 в ПК не выявлено морфологически патологических измененных НГ. В тоже время у 11,5 % пациентов с ПКС отмечено появление NETs и клеток с патологическим апоптозом, при этом ИДК  НГ-ПКС был в  8 раз меньше (p<0,05), чем в группе сравнения и не отличался от показателей пациентов со среднетяжелым течением COVID-19 (p>0,05), что диктует необходимость дальнейшего диспансерного наблюдения таких пациентов.

Заключение. Полученные в настоящем исследовании данные свидетельствуют о том, что  разработанный интеграционный диагностический критерий позволяет оценить как тяжесть  течения COVID-19  в острый период, так и риск возникновения  постковидного синдрома.  Следует подчеркнуть, что выявленные при COVID-19 характерные изменения НГ можно легко идентифицировать в ПК и последовательно отслеживать по расчетному интегральному диагностическому критерию. Значительное снижение ИДК свидетельствует о сохраняющейся гиперактивации НГ и необходимости проведения таргетной иммунотерапии, направленной на модулирование дисфункций НГ.

Об авторах

И. В. Нестерова
1ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России, 2ФГАБОУ ВО Российский университет дружбы народов Министерства образования и науки России
Россия

доктор медицинских наук, профессор, 1главный научный сотрудник отдела клиническо-экспериментальной иммунологии и молекулярной биологии Центральной научно-исследовательской лаборатории Кубанского государственного медицинского университета; 2 профессор кафедры клинической иммунологии, аллергологии и адаптологии факультета непрерывного медицинского образования Медицинского института РУДН


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов



М. Г. Атажахова
ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России

аспирант кафедры клинической иммунологии, аллергологии и лабораторной диагностики факультета повышения квалификации и профессиональной переподготовки специалистов 


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов



В. А. Матушкина
ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России

аспирант кафедры кафедрой инфекционных болезней и эпидемиологии факультета повышения квалификации и профессиональной переподготовки специалистов


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов



Ю. В. Тетерин
ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России

аспирант кафедры клинической иммунологии, аллергологии и лабораторной диагностики факультета повышения квалификации и профессиональной переподготовки специалистов 


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов



В. Н. Городин
ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России

доктор медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой инфекционных болезней и эпидемиологии факультета повышения квалификации и профессиональной переподготовки специалистов


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов



Г. А. Чудилова
ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

д.б.н.,доцент, профессор кафедры иммунологии,аллергологии и лабораторной диагностики ФПК и ППС,заведующая отелом клинико-экспериментальной иммунологии и молекулярной биологии Центральной научно-исследовательской лаборатории


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов



Список литературы

1. Al-Kuraishy H.M., Al-Gareeb A.I., Abdullah S.M., Cruz-Martins N., Batiha G.E. Case Report: Hyperbilirubinemia in Gilbert Syndrome Attenuates Covid-19-Induced Metabolic Disturbances. Frontiers in Cardiovascular Medicine, 2021, Vol.8, pp.642181. DOI: 10.3389/fcvm.2021.642181

2. Al-Kuraishy H.M., Al-Gareeb A.I., Qusti S., Alshammari E.M., Atanu F.O., Batiha G.E. Arginine vasopressin and pathophysiology of COVID-19: An innovative perspective. Biomed Pharmacotherapy, 2021, Vol.143, pp.112193. DOI: 10.1016/j.biopha.2021.112193

3. Al-Kuraishy H.M., Al-Gareeb A.I., Qusty N., Cruz-Martins N., El-Saber Batiha G. Sequential doxycycline and colchicine combination therapy in Covid-19: The salutary effects. Pulmonary Pharmacology Therapeutics. 2021, Vol.67, p.102008. DOI: 10.1016/j.pupt.2021.102008.

4. Apel F., Andreeva L., Knackstedt L., Streeck R., Frese C., Goosmann C., Zychlinsky A. The Cytosolic DNA Sensor cGAS Recognizes Neutrophil Extracellular Traps. Science Signaling, 2021,Vol.14,pp.7942. DOI: 10.1126/scisignal.aax7942

5. Barnes B.J., Adrover J.M., Baxter-Stoltzfus A., Borczuk A., Cools-Lartigue J., Crawford J.M., Daßler-Plenker J., Guerci P., Huynh C., Knight J.S., Loda M., Looney M.R., McAllister F., Rayes R., Renaud S., Rousseau S., Salvatore S., Schwartz R.E., Spicer J.D., Yost C.C., Weber A., Zuo Y., Egeblad M. Targeting potential drivers of COVID-19: Neutrophil extracellular traps. Journal of Experimental Medicine, 2020, Vol.217, no.6, pp.20200652. DOI: 10.1084/jem.20200652

6. Berthelot J., Drouet L., Lioté F., Kawasaki-Like Diseases and Thrombotic Coagulopathy in COVID-19: Delayed Over-Activation of the STING Pathway? Emerging Microbes and Infections, 2020, no.9, pp.1514–22. DOI: 10.1080/22221751.2020.1785336

7. Bonow R.O., Fonarow G.C., O'Gara P.T., Yancy C.W. Association of Coronavirus Disease 2019 (COVID-19) With Myocardial Injury and Mortality. JAMA Cardiology, 2020, Vol.5, no.7, pp.751-753. DOI: 10.1001/jamacardio.2020.1105

8. Brinkmann V., Reichard U., Goosmann C., Fauler B., Uhlemann Y., Weiss D.S., Weinrauch Y., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science, 2004, Vol.303, pp.1532–1535. DOI: 10.1126/science.1092385

9. Chen N., Zhou M., Dong X., Qu J., Gong F., Han Y., Qiu Y., Wang J., Liu Y., Wei Y., Xia J., Yu T., Zhang X., Zhang L. Epidemiological and clinical characteristics of 99 cases of 2019 novel coronavirus pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study. Lancet, 2020, Vol.395, no.10223, pp.507-513. DOI: 10.1016/S0140-6736(20)30211-7.

10. Darcy C., Minigo G., Piera K., Davis J., McNeil Y., Chen Y., Volkheimer A.D.,Weinberg J.B., Anstey N. M., Woodberry T. Neutrophils With Myeloid Derived Suppressor Function Deplete Arginine and Constrain T Cell Function in Septic Shock Patients. Crit Care. 2014, Vol.18, pp.163. DOI: 10.1186/cc14003

11. Dennison D., Al Khabori M., Al Mamari S., Aurelio A., Al Hinai H., Al Maamari K., Alshekaili J., Al Khadouri G. Circulating activated neutrophils in COVID-19: An independent predictor for mechanical ventilation and death. International Journal of Infectious Diseases, 2021, Vol.106, pp.155-159. DOI: 10.1016/j.ijid.2021.03.066.

12. Fois A.G., Paliogiannis P., Scano V., Cau S., Babudieri S., Perra R., Ruzzittu G., Zinellu E., Pirina P., Carru C., Arru L. B., Fancellu A., Mondoni M., Mangoni A. A., Zinellu A. The Systemic Inflammation Index on Admission Predicts In-Hospital Mortality in COVID-19 Patients. Molecule, 2020, Vol.25, pp.5725. DOI: 10.3390/molecules25235725.

13. Hiroki C., Toller-Kawahisa J., Fumagalli M., Colon D., Figueiredo L., Fonseca B., Franca R. F.O., Cunha F.Q. Neutrophil Extracellular Traps Effectively Control Acute Chikungunya Virus Infection. Frontiers in Immunology, 2020, Vol.10, pp.3108. DOI: 10.3389/fimmu.2019.03108

14. Jimeno S., Ventura P.S., Castellano J.M., García-Adasme S.I., Miranda M., Touza P., Lllana I. L, López-Escobar A. Prognostic implications of neutrophil-lymphocyte ratio in COVID-19. European Journal of Clinical Investigation, 2021, Vol.51, no.1, pp.13404. DOI: 10.1111/eci.13404

15. Jorch S.K., Kubes P. An emerging role for neutrophil extracellular traps in noninfectious disease. Nature Medicine, 2017, Vol. 23, pp.279–287. DOI: 10.1038/nm.4294

16. Kantri A., Ziati J., Khalis M., Haoudar A., Aidaoui K.E., Daoudi Y., Chikhaoui I., Yamani K.E., Mouhaoui M., Bakkouri J.E., Dini N., Mahi M. , Naitlho A., Bahlaoui A., Bennana A., Noussair M., Belyamani L., Kettani Ch.El. Hematological and Biochemical Abnormalities Associated with Severe Forms of COVID-19: A Retrospective Single-Center Study from Morocco. PLoS ONE, 2021, Vol.16, pp.0246295. DOI: 10.1371/journal.pone.0246295.,

17. Lefrançais E., Mallavia B., Zhuo H., Calfee C.S., Looney M.R. Maladaptive role of neutrophil extracellular traps in pathogen-induced lung injury. JCI Insight., 2018, Vol.3, no.3, pp.98178. DOI: 10.1172/jci.insight.98178.

18. Masso-Silva J., Moshensky A., Lam M., Odish M., Patel A., Xu L., Hansen E., Trescott S., Nguyen C., Kim R., Perofsky K., Perera S., Ma L., Pham J., Rolfsen M., Olay J., Shin J., Dan J. M., Abbott R. K., Ramirez S., Alexander T.H., Lin G. Y., Fuentes A. L., Advani I., Gunge D., Pretorius V., Malhotra A., Sun X., Duran J., Hepokoski M.,. Crotty Sh, Coufal N. G., Meier A., Crotty A. L. E. Increased Peripheral Blood Neutrophil Activation Phenotypes and Neutrophil Extracellular Trap Formation in Critically Ill Coronavirus Disease 2019 (COVID-19) Patients: A Case Series and Review of the Literature. Clinical Infectious Diseases, 2022, Vol.74, pp.479–89. DOI: 10.1093/cid/ciab437

19. McKenna E., Wubben R., Isaza-Correa J.M., Melo A.M., Mhaonaigh A.U., Conlon N., O’Donnell J.S., Ní Cheallaigh C., Hurley T., Stevenson N.J., Little M.A., Molloy E.J. Neutrophils in COVID-19: Not Innocent Bystanders. Frontiers in Immunology, 2022, Vol.13, pp.864387. DOI: 10.3389/fimmu.2022.864387

20. Merino A., Vlagea A., Molina A., Egri N., Laguna J., Barrera K., Boldú L., Acevedo A., Díaz-Pavón M., Sibina F., Bascón F., Sibila O., Juan M., Rodellar J. Atypical lymphoid cells circulating in blood in COVID-19 infection: morphology, immunophenotype and prognosis value. Journal of Clinical Pathology, 2022, Vol.75, pp.104-111. DOI: 10.1136/jclinpath-2020-207087

21. Middleton E.A., He X.Y., Denorme F., Campbell R.A., Ng D., Salvatore S.P., Mostyka M., Baxter-Stoltzfus A., Borczuk A.C., Loda M., Cody M.J., Manne B.K., Portier I., Harris E.S., Petrey A.C., Beswick E.J., Caulin A.F., Iovino A., Abegglen L.M., Weyrich A.S., Rondina M.T., Egeblad M., Schiffman J.D., Yost C.C. Neutrophil extracellular traps contribute to immunothrombosis in COVID-19 acute respiratory distress syndrome. Blood, 2020, Vol.136, no.10, pp.1169-1179. DOI: 10.1182/blood.2020007008.

22. Naumenko V., Turk M., Jenne C., Kim S. Neutrophils in Viral Infection. Cell Tissue Res, 2018, Vol. 371, pp.505–516. DOI: 10.1007/s00441-017-2763-0

23. Nesterova, I.V. ,Khalturina E.O., Malinovskaya V.V., Nguen Duen L. Recombinant IFNα2b in complex with immunotropic drugs restored antiviral functions of subset IFNα/βR1+IFNγR+TLR4+ neutrophilic granulocyte and demonstrated good clinical efficacy in patients with active chronic herpes-viral infections and chronic fatigue syndrome. Ebook Edition, Filodiritto Publisher, 2021, pp. 70-78. DOI: 10.26352/F624R9006_ALLERGY-ASTHMA2021

24. Nicolai L., Leunig A., Brambs S., Kaiser R., Joppich M., Hoffknecht M.L., Gold C., Engel A., Polewka V., Muenchhoff M., Hellmuth J.C., Ruhle A., Ledderose S., Weinberger T., Schulz H., Scherer C., Rudelius M., Zoller M., Keppler O.T., Zwißler B., von Bergwelt-Baildon M., Kääb S., Zimmer R., Bülow R.D., von Stillfried S., Boor P., Massberg S., Pekayvaz K., Stark K. Vascular neutrophilic inflammation and immunothrombosis distinguish severe COVID-19 from influenza pneumonia. Thrombosis and Haemostasis, 2021, Vol.19, no.2, pp.574-581. DOI: 10.1111/jth.15179.

25. Papayannopoulos V. Neutrophil extracellular traps in immunity and disease. Nature Reviews Immunology, 2018, Vol.18, no.2, pp.134-147. DOI: 10.1038/nri.2017.105.

26. Qu R., Ling Y., Zhang Y.H., Wei L.Y., Chen X., Li X.M., Liu X.Y., Liu H.M., Guo Z., Ren H., Wang Q. Platelet-to-lymphocyte ratio is associated with prognosis in patients with coronavirus disease-19. Journal of Medical Virology, 2020, Vol.92, no.9, pp.1533-1541. DOI: 10.1002/jmv.25767.

27. Singh A., Sood N., Narang V., Narang V., Goyal A. Morphology of COVID-19–affected cells in peripheral blood film. BMJ Case Reports CP 2020, Vol.13, pp.236117. http://dx.doi.org/10.1136/bcr-2020-236117

28. Teluguakula N. Neutrophils Set Extracellular Traps to Injure Lungs in Coronavirus Disease 2019. The Journal of Infectious Diseases, 2021, Vol.223, no.9, pp.1503-1505. DOI: 10.1093/infdis/jiab053

29. Thiam H., Wong S., Wagner D., Waterman C. Cellular Mechanisms of NETosis. Annual Review of Cell and Developmental Biology, 2020, Vol. 36, pp.191–218. DOI: 10.1146/annurev-cellbio-020520-111016

30. Veras F.P., Pontelli M.C., Silva C.M., Toller-Kawahisa J.E., de Lima M., Nascimento D.C., Schneider A.H., Caetité D., Tavares L.A., Paiva I.M., Rosales R., Colón D., Martins R., Castro I.A., Almeida G.M., Lopes M.I.F., Benatti M.N., Bonjorno L.P., Giannini M.C., Luppino-Assad R., Almeida S.L., Vilar F., Santana R., Bollela V.R., Auxiliadora-Martins M., Borges M., Miranda C.H., Pazin-Filho A., da Silva L.L.P., Cunha L.D., Zamboni D.S., Dal-Pizzol F., Leiria L.O., Siyuan L., Batah S., Fabro A., Mauad T., Dolhnikoff M., Duarte-Neto A., Saldiva P., Cunha T.M., Alves-Filho J.C., Arruda E., Louzada-Junior P., Oliveira R.D., Cunha F.Q. SARS-CoV-2-triggered neutrophil extracellular traps mediate COVID-19 pathology. Journal of Experimental Medicine, 2020, Vol.217, no.12, pp.20201129. DOI: 10.1084/jem.20201129.

31. Wang X., Li X., Shang Y., Wang J., Zhang X., Su D., Zhao S., Wang Q., Liu L., Li Y., Chen H. Ratios of neutrophil-to-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte predict all-cause mortality in inpatients with coronavirus disease 2019 (COVID-19): a retrospective cohort study in a single medical centre. Epidemiol Infection, 2020, Vol.148, pp.211. DOI: 10.1017/S0950268820002071

32. Wang Y., Luo L., Braun O.Ö., Westman J., Madhi R., Herwald H., Mörgelin M., Thorlacius H. Neutrophil extracellular trap-microparticle complexes enhance thrombin generation via the intrinsic pathway of coagulation in mice. Scientific Reports, 2018 ,Vol.8, no.1, pp.4020. DOI: 10.1038/s41598-018-22156-5.

33. Wu C, Chen X, Cai Y, Xia J., Zhou X., Xu Sh., Huang H., Zhang Li, Zhou X., Du Ch, Zhang Y., Song J., Wang S., Chao Y., Yang Z., Xu J., Zhou X., Chen D., Xiong W., Xu L., Zhou F., Jiang J., Bai Ch., Zheng J., Song Y. Risk Factors Associated With Acute Respiratory Distress Syndrome and Death in Patients With Coronavirus Disease 2019 Pneumonia in Wuhan, China. JAMA Intern Med., 2020, Vol.180, no.7, pp.934–943. DOI:10.1001/jamainternmed.2020.0994

34. Yang A.-P., Liu J., Tao W., Li H. The Diagnostic and Predictive Role of NLR, d-NLR and PLR in COVID-19 Patients. Int. Immunopharmacol., 2020, Vol.84, pp.106504.DOI: 10.1016/j.intimp.2020.106504.

35. Yip C.Y.C., Yap E.S., De Mel S., Teo Z. Y., Lee Ch.-T., Kan S., Lee M. C. C., Loh W. N. H., Lim E.L., Lee Sh. Y. Temporal changes in immune blood cell parameters in COVID-19 infection and recovery from severe infection. British Journal of Haematology, 2020, Vol.190, no.1, pp.33-36. DOI: 10.1111/bjh.16847.

36. Zhang D., Guo R., Lei L., Liu H., Wang Y., Wang Y., Qian H., Dai T., Zhang T., Lai Y., Wang J., Liu Z., Chen T., He A., O’Dwyer M., Hu J. COVID-19 infection induces readily detectable morphological and inflammation-related phenotypic changes in peripheral blood monocytes, the severity of which correlate with patient outcome. MedRxiv, 2020.03.24.20042655. DOI: 10.1101/2020.03.24.20042655.

37. Zuo Y., Zuo M., Yalavarthi S., Gockman K., Madison J., Shi H., Madison J.A., Woodard H.Sh.W., Lezak S. P., Lugogo N.L., Knight J. S., Kanthi Y. Neutrophil Extracellular Traps and Thrombosis in COVID-19. Journal of Thrombosis and Thrombolysis, 2021, Vol. 51, pp.446–53. DOI: 10.1007/s11239-020-02324-z


Дополнительные файлы

1. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (37KB)    
Метаданные
2. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (20KB)    
Метаданные
3. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (18KB)    
Метаданные
4. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (717KB)    
Метаданные
5. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (51KB)    
Метаданные
6. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (14KB)    
Метаданные
7. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (18KB)    
Метаданные
8. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (15KB)    
Метаданные
9. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (35KB)    
Метаданные
10. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (431KB)    
Метаданные
11. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (1MB)    
Метаданные
12. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (41KB)    
Метаданные

Рецензия

Для цитирования:


Нестерова И.В., Атажахова М.Г., Матушкина В.А., Тетерин Ю.В., Городин В.Н., Чудилова Г.А. ИНТЕГРАЦИОННЫЙ ДИАГНОСТИЧЕСКИЙ КРИТЕРИЙ, ОЦЕНИВАЮЩИЙ ТЯЖЕСТЬ ТЕЧЕНИЯ COVID-19 И РИСК ВОЗНИКНОВЕНИЯ ПОСТКОВИДНОГО СИНДРОМА. Медицинская иммунология. https://doi.org/10.15789/1563-0625-IDC-2594

For citation:


Nesterova I., Atazhakhova M., Matushkina V., Teterin Yu., Gorodin V., Chudilova G. INTEGRATION DIAGNOSTIC CRITERION FOR EVALUATION OF THE SEVERITY OF COVID-19 AND THE RISK OF POST-COVID SYNDROME. Medical Immunology (Russia). (In Russ.) https://doi.org/10.15789/1563-0625-IDC-2594

Просмотров: 152


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1563-0625 (Print)
ISSN 2313-741X (Online)