mimmunМедицинская иммунологияMedical Immunology (Russia)1563-06252313-741XSPb RAACI10.15789/1563-0625-FOC-2064mimmun-2064Research ArticleКРАТКИЕ СООБЩЕНИЯSHORT COMMUNICATIONSОсобенности цитокинового профиля при саркоидозеFeatures of cytokine profile in patients with sarcoidosisЛазареваН. М.LazarevaN. M.

Лазарева Наталья Михайловна – старший лаборант кафедры иммунологии

197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, 6-8

Lazareva Natalia M., Senior Laboratory Assistant, Department of Immunology, First St. Petersburg State I. Pavlov Medical University, St. Petersburg, Russian Federation

197022, St. Petersburg, L. Tolstoy str., 6-8

nmlazareva@gmail.comБарановаО. П.BaranovaO. P.

Баранова Ольга Петровна – кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник Научно-исследовательского института интерстициальных и орфанных заболеваний легких, доцент кафедры пульмонологии

Санкт-Петербург

Baranova Olga P., PhD (Medicine), Senior Research Associate, Research Institute of Interstitial and Orphan Lung Diseases, Associate Professor, Department of Pulmonology

St. Petersburg

dr_baranova@mail.ruКудрявцевИ. В.KudryavtsevI. V.

Кудрявцев Игорь Владимирович – кандидат биологических наук, доцент кафедры иммунологии ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ; заведующий лабораторией иммунорегуляции, отдел иммунологии ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины»

Санкт-Петербург

Kudryavtsev Igor V., PhD (Biology), Associate Professor, Department of Immunology, First St. Petersburg State I. Pavlov Medical University; Senior Research Associate, Department of Immunology, Institute of Experimental Medicine

St. Petersburg

igorek1981@yandex.ruАрсентьеваН. А.ArsentievaN. A.

Арсентьева Наталья Александровна – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории молекулярной иммунологии

Санкт-Петербург

Arsentieva Natalia A., PhD (Biology), Senior Research Associate, Laboratory of Molecular Immunology

St. Petersburg

arsentieva_n.a@bk.ruЛюбимоваН. Е.LiubimovaN. E.

Любимова Наталья Евгеньевна – кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории молекулярной иммунологии

Санкт-Петербург

Liubimova Natalia E., PhD (Biology), Research Associate, Laboratory of Molecular Immunology

St. Petersburg

natelu@mail.ruСесьТ. П.Ses’T. P.

Сесь Татьяна Павловна – доктор биологических наук, профессор, профессор кафедры иммунологии

Санкт-Петербург

Ses’ Tatyana P., PhD, MD (Biology), Professor,Department of Immunology

St. Petersburg

sestp@mail.ruИльковичМ. М.IlkovichM. M.

Илькович Михайл Михайлович – доктор медицинских наук, профессор, директор Научноисследовательского института интерстициальных и орфанных заболеваний легких, заведующий кафедрой пульмонологии

Санкт-Петербург

Ilkovich Mikhail M., PhD, MD (Medicine), Professor, Director, Research Institute of Interstitial and Orphan Lung Diseases, Head, Department of Pulmonology

St. Petersburg

dr_baranova@mail.ruТотолянАрег А.TotolianAreg A.

Тотолян Арег Артемович – доктор медицинских наук, профессор, академик РАН, заведующий кафедрой иммунологии ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ; директор ФБУН «Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера»

Санкт-Петербург

Totolian Areg A., PhD, MD (Medicine), Professor, Full Member, Russian Academy of Sciences, Head, Department of Immunology, First St. Petersburg State I. Pavlov Medical University; Director, St. Petersburg Pasteur Institute

St. Petersburg

totolian@spbraaci.ruФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФРоссияFirst St. Petersburg State I. Pavlov Medical UniversityRussian FederationФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ; ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины»РоссияFirst St. Petersburg State I. Pavlov Medical University; Institute of Experimental MedicineRussian FederationФБУН «Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера»РоссияSt. Petersburg Pasteur InstituteRussian FederationФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения РФ; ФБУН «Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера»РоссияFirst St. Petersburg State I. Pavlov Medical University; St. Petersburg Pasteur InstituteRussian Federation2020271120202259931002Copyright © Лазарева Н.М., Баранова О.П., Кудрявцев И.В., Арсентьева Н.А., Любимова Н.Е., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян А.А., 20202020Лазарева Н.М., Баранова О.П., Кудрявцев И.В., Арсентьева Н.А., Любимова Н.Е., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян А.А.Lazareva N.M., Baranova O.P., Kudryavtsev I.V., Arsentieva N.A., Liubimova N.E., Ses’ T.P., Ilkovich M.M., Totolian A.A.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2064

Саркоидоз – это воспалительное заболевание неизвестной этиологии с поражением легких и других органов, в которых формируются характерные гранулемы без признаков некроза. При этом происходит активация клеток иммунной системы, в частности Т-лимфоцитов, и продукция широкого спектра цитокинов. Целью данного исследования явилось изучение особенностей цитокинового профиля плазмы крови больных саркоидозом. Были исследованы образцы плазмы периферической крови больных саркоидозом (n = 52). Контролем служили образцы периферической крови, полученные от 22 практически здоровых лиц. Определялся уровень 46 цитокинов (пг/мл): IL-1α, IL-1β, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7, IL-9, IL-12 (p40), IL-12 (p70), IL-13, IL-15, IL-17A, IFNα2, IFNγ, TNFα, TNFβ, IL-1Ra, IL-10, EGF, FGF-2, Flt3 Ligand, G-CSF, GM-CSF, PDGF-AA, PDGF-AB/BB, TGFα, VEGF-A, sCD40L, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CCL7, CCL11, CCL17, CCL20, CCL22, CXCL1, CXCL8, CXCL9, CXCL10, CXCL11, CXCL13, CX3CL1. Обнаружено достоверно повышенное содержание интерлейкинов и некоторых провоспалительных цитокинов: IL-3 – 0,70 против 0,20, p = 0,003; IL-4 – 14,37 против 3,15, p = 0,009; IL-5 – 1,06 против 0,89, p < 0,001; IL-12 (p70) – 1,27 против 0,56, p = 0,028; IL-17A – 1,48 против 0,43, p < 0,001; IFNα2 – 41,79 против 25,04, p = 0,003; IFNγ – 4,13 против 1,14, p < 0,001; TNFα – 21,67 против 6,70, p < 0,001; противовоспалительного цитокина IL-10: 1,03 против 0,45, p = 0,019; ростовых факторов: FGF-2 – 40,08 против 30,58, p = 0,008, G-CSF – 24,18 против 8,21, p = 0,006 и VEGF-A – 42,52 против 26,76, p = 0,048; хемокинов: CCL3 – 3,86 против 1,33, p < 0,001; CCL17 – 78,24 против 26,24, p < 0,001; CCL20 – 7,19 против 5,64, p = 0,021; CCL22 – 660,60 против 405,00, p < 0,001; CXCL9 – 4013 против 1142, p < 0,001; CXCL10 – 565,90 против 196,60, p < 0,001; CXCL11 – 230,20 против 121,10, p = 0,018; CX3CL1 – 56,99 против 5,16, p < 0,001. Концентрации хемокина CCL11 у больных относительно группы условно здоровых достоверно снижены: 77,58 против 124,70, при p = 0,022. Выявление особенностей цитокинового профиля у больных саркоидозом может свидетельствовать об их важной роли в процессах формирования и исходов гранулем. А также требует дополнительного более детального изучения, сопоставления с фенотипами, вариантами течения и исхода заболевания.

Sarcoidosis is an inflammatory disease of unknown etiology with damage to the lungs and other organs characterized by development of necrosis-free epithelioid cell granulomas. Granulomatous inflammation characterized by the activation of different immune systems cells, in particular T lymphocytes, and the cytokines production. Our study was aimed at investigating the characteristics of the cytokine profile of blood plasma in patients with sarcoidosis. We studied peripheral blood plasma samples of patients with sarcoidosis (n = 52). The control blood samples were taken from healthy volunteers (n = 22). The level of 46 cytokines (pg/ml) was determined, as follows: IL-1α, IL-1β, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL- 6, IL-7, IL-9, IL-12 (p40), IL-12 (p70), IL-13, IL-15, IL-17A, IFNα2, IFNγ, TNFα, TNFβ, IL- 1ra, IL-10, EGF, FGF-2, Flt3 Ligand, G-CSF, GM-CSF, PDGF-AA, PDGF-AB / BB, TGFα, VEGF-A, sCD40L, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CCL7, CCL11, CCL17, CCL20, CCL22, CXCL1, CXCL8, CXCL9, CXCL10, CXCL11, CXCL13, CX3CL1. Significantly higher levels of interleukins and some proinflammatory cytokines were found in the patients with sarcoidosis, i.e., IL-3, 0.70 vs 0.20, p = 0.003; IL-4, 14.37 vs 3.15, p = 0.009; IL-5, 1.06 vs 0.89, p < 0.001; IL-12 (p70), 1.27 vs 0.56, p = 0.028; IL-17A, 1.48 vs 0.43, p < 0.001; IFNα2, 41.79 vs 25.04, p = 0.003; IFNγ, 4.13 vs 1.14, p < 0.001; TNFα, 21.67 vs 6.70, p < 0.001; anti-inflammatory cytokine IL-10, 1.03 vs 0.45, p = 0.019; growth factors: FGF-2, 40.08 vs 30.58, p = 0.008, G-CSF, 24.18 vs 8.21, p = 0.006, and VEGF-A, 42.52 vs 26.76, p = 0.048; chemokines: CCL3, 3.86 vs 1.33, p < 0,001; CCL17, 78.24 vs 26.24, p < 0.001; CCL20, 7.19 vs 5.64, p = 0.021; CCL22, 660.60 vs 405.00, p < 0,001; CXCL9, 4013 vs 1142, p < 0,001; CXCL10, 565.90 vs 196.60, p < 0.001; CXCL11, 230.20 vs 121.10, p = 0.018; CX3CL1, 56.99 vs 5.16, p < 0.001. Peripheral blood chemokine CCL11 levels were significantly lower in patients compared to the group of healthy volunteers: 77.58 vs 124.70, p = 0.022. The features of the cytokine profile in patients with sarcoidosis may indicate their important role in the processes of formation and outcomes of granulomas. These issues require an additional detailed study, comparison with phenotypes, differential course and outcomes of the disease.

саркоидозцитокиныхемокиныростовые факторыплазма кровиsarcoidosiscytokineschemokinesgrowth factorsperipheral blood plasmaReferencesБаранова О.П., Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Цитотоксические Т-лимфоциты при хроническом течении саркоидоза // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 4. С. 605-608.Baranova O.P., Kudryavtsev I.V., Lazareva N.M., Serebriakova M.K., Ses’ T.P., Ilkovich M.M., Totolian Areg A. Cytotoxic T lymphocytes in chronic sarcoidosis. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2018, Vol. 12 (21), no. 4, pp. 605-608. (In Russ.)Илькович М.М. Интерстициальные и орфанные заболевания легких. М.: ГЕОТАР-Медиа, 2016. 560 с.Ilkovich M.M. Interstitial and orphan lung diseases. Moscow: GEOTAR-Media, 2016. 560 p.Кудрявцев И.В., Борисов А.Г., Кробинец И.И., Савченко А.А., Серебрякова М.К., Тотолян А.А. Хемокиновые рецепторы на Т-хелперах различного уровня дифференцировки: основные субпопуляции // Медицинская иммунология, 2016. T. 18, № 3. С. 239-250. doi: 10.15789/1563-0625-2016-3-239-250.Kudryavtsev I.V., Borisov A.G., Krobinets I.I., Savchenko A.A., Serebryakova M.K., Totolyan A.A. Chemokine receptors at distinct differentiation stages of T-helpers from peripheral blood. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2016, Vol. 18, no. 3, pp. 239-250. (In Russ.) doi: 10.15789/1563-0625-2016-3-239-250.Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Особенности экспрессии CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами при саркоидозе // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 3. С. 329-334.Kudryavtsev I.V., Lazareva N.M., Baranova O.P., Serebriakova M.K., Ses’ T.P., Ilkovich M.M., Totolian Areg A. CD57 expression by peripheral blood cytotoxic T cells in sarcoidosis. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2018, Vol. 12 (21), no. 3, pp. 329-334. (In Russ.)Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Баранова О.П., Головкин А.С., Исаков Д.В., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Экспрессия CD39 регуляторными Т-лимфоцитами при хроническом и остром саркоидозе // Медицинская иммунология, 2019. Т. 21, № 3. С. 467-478. doi: 10.15789/1563-0625-2019-3-467-478.Kudryavtsev I.V., Lazareva N.M., Baranova O.P., Golovkin A.S., Isakov D.V., Serebriakova M.K., Ses’ T.P., Ilkovich M.M., Totolian Areg A. CD39+ expression by regulatory T cells in pulmonary sarcoidosis and Lofgren’s syndrome. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2019, Vol. 21, no. 3, pp. 467-478. (In Engl.) doi: 10.15789/1563-0625-2019-3-467-478.Лазарева Н.М., Кудрявцев И.В., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Субпопуляционный состав цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови при саркоидозе // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 3. С. 348-353.Лазарева Н.М., Кудрявцев И.В., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Субпопуляционный состав цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови при саркоидозе // Российский иммунологический журнал, 2018. Т. 12 (21), № 3. С. 348-353. [Lazareva N.M., Kudryavtsev I.V., Baranova O.P., Serebriakova M.K., Ses’ T.P., Ilkovich M.M., Totolian Areg A. Peripheral blood cytotoxic T cells in patients with sarcoidosis. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2018, Vol. 12 (21), no. 3, pp. 348-353. (In Russ.)]Лазарева Н.М., Кудрявцев И.В., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян Арег А. Анализ субпопуляций В-лимфоцитов в периферической крови больных саркоидозом при разной степени активности заболевания // Медицинская иммунология, 2019. Т. 21, № 6. С. 1081-1098. doi: 10.15789/1563-0625-2019-6-1081-1098.Lazareva N.M., Kudryavtsev I.V., Baranova O.P., Serebriakova M.K., Ses’ T.P., Ilkovich M.M., Totolian Areg A. Peripheral blood B cell subsets from patients with various activity of chronic sarcoidosis. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2019, Vol. 21, no. 6, pp. 1081-1098. (In Russ.) doi: 10.15789/1563-0625-2019-6-1081-1098.Aksoy M.O., Yang Y., Ji R., Reddy P.J., Shahabuddin S., Litvin J., Rogers T.J., Kelsen S.G. CXCR3 surface expression in human airway epithelial cells: cell cycle dependence and effect on cell proliferation. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol., 2006, Vol. 290, no. 5, pp. 909-918.Aksoy M.O., Yang Y., Ji R., Reddy P.J., Shahabuddin S., Litvin J., Rogers T.J., Kelsen S.G. CXCR3 surface expression in human airway epithelial cells: cell cycle dependence and effect on cell proliferation. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol., 2006, Vol. 290, no. 5, pp. 909-918.Arger N.K., Ho M.E., Allen I.E., Benn B.S., Woodruff P.G., Koth L.L. CXCL9 and CXCL10 are differentially associated with systemic organ involvement and pulmonary disease severity in sarcoidosis. Respir. Med., 2020, Vol. 161, 105822. doi: 10.1016/j.rmed.2019.105822.Arger N.K., Ho M.E., Allen I.E., Benn B.S., Woodruff P.G., Koth L.L. CXCL9 and CXCL10 are differentially associated with systemic organ involvement and pulmonary disease severity in sarcoidosis. Respir. Med., 2020, Vol. 161, 105822. doi: 10.1016/j.rmed.2019.105822.d’Ambrosio D., Albanesi C., Lang R., Girolomoni G., Sinigaglia F. and Laudanna C. Quantitative differences in chemokine receptor engagement generate diversity in integrin-dependent lymphocyte adhesion. J. Immunol., 2002, Vol. 169, pp. 2303-2312.d’Ambrosio D., Albanesi C., Lang R., Girolomoni G., Sinigaglia F. and Laudanna C. Quantitative differences in chemokine receptor engagement generate diversity in integrin-dependent lymphocyte adhesion. J. Immunol., 2002, Vol. 169, pp. 2303-2312.Garcia-Lopez M.A., Sanchez-Madrid F., Rodriguez-Frade J.M., Mellado M., Acevedo A., Garcia M.I., Albar J.P., Martinez C., Marazuela M. CXCR3 chemokine receptor distribution in normal and inflamed tissues: expression on activated lymphocytes, endothelial cells, and dendritic cells. Lab. Invest., 2001, Vol. 81, pp. 409-418.Garcia-Lopez M.A., Sanchez-Madrid F., Rodriguez-Frade J.M., Mellado M., Acevedo A., Garcia M.I., Albar J.P., Martinez C., Marazuela M. CXCR3 chemokine receptor distribution in normal and inflamed tissues: expression on activated lymphocytes, endothelial cells, and dendritic cells. Lab. Invest., 2001, Vol. 81, pp. 409-418.Greaves S.A., Atif S.M., Fontenot A.P. Adaptive immunity in pulmonary sarcoidosis and chronic beryllium disease. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 474. doi: 10.3389/fimmu.2020.00474.Greaves S.A., Atif S.M., Fontenot A.P. Adaptive immunity in pulmonary sarcoidosis and chronic beryllium disease. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 474. doi: 10.3389/fimmu.2020.00474.Groom J.R., Luster A.D. CXCR3 ligands: redundant, collaborative and antagonistic functions. Immunol. Cell Biol., 2011, Vol. 89, no. 2, pp. 207-215.Groom J.R., Luster A.D. CXCR3 ligands: redundant, collaborative and antagonistic functions. Immunol. Cell Biol., 2011, Vol. 89, no. 2, pp. 207-215.Kobak S. Sarcoidosis: a rheumatologist’s perspective. Ther. Adv. Musculoskelet. Dis., 2015, Vol. 7, no. 5, pp. 196-205.Kobak S. Sarcoidosis: a rheumatologist’s perspective. Ther. Adv. Musculoskelet. Dis., 2015, Vol. 7, no. 5, pp. 196-205.Miedema J.R., Kaiser Y., Broos C.E., Wijsenbeek M.S., Grunewald J., Kool M. Th17-lineage cells in pulmonary sarcoidosis and Löfgren’s syndrome: friend or foe? J. Autoimmun., 2018, Vol. 87, pp. 82-96.Miedema J.R., Kaiser Y., Broos C.E., Wijsenbeek M.S., Grunewald J., Kool M. Th17-lineage cells in pulmonary sarcoidosis and Löfgren’s syndrome: friend or foe? J. Autoimmun., 2018, Vol. 87, pp. 82-96.Muehlinghaus G., Cigliano L., Huehn S., Peddinghaus A., Leyendeckers H., Hauser A.E. Regulation of CXCR3 and CXCR4 expression during terminal differentiation of memory B cells into plasma cells. Blood, 2005, Vol. 105, pp. 3965-3971.Muehlinghaus G., Cigliano L., Huehn S., Peddinghaus A., Leyendeckers H., Hauser A.E. Regulation of CXCR3 and CXCR4 expression during terminal differentiation of memory B cells into plasma cells. Blood, 2005, Vol. 105, pp. 3965-3971.Nguyen C.T.H., Kambe N., Ueda-Hayakawa I., Kishimoto I., Ly N.T.M., Mizuno K., Okamoto H. TARC expression in the circulation and cutaneous granulomas correlates with disease severity and indicates Th2-mediated progression in patients with sarcoidosis. Allergol. Int., 2018, Vol. 67, no. 4, pp. 487-495.Nguyen C.T.H., Kambe N., Ueda-Hayakawa I., Kishimoto I., Ly N.T.M., Mizuno K., Okamoto H. TARC expression in the circulation and cutaneous granulomas correlates with disease severity and indicates Th2-mediated progression in patients with sarcoidosis. Allergol. Int., 2018, Vol. 67, no. 4, pp. 487-495.Nishioka Y., Manabe K., Kishi J., Wang W., Inayama M., Azuma M., Sone S. CXCL9 and 11 in patients with pulmonary sarcoidosis: a role of alveolar macrophages. Clin. Exp. Immunol., 2007, Vol. 149, pp. 317-326.Nishioka Y., Manabe K., Kishi J., Wang W., Inayama M., Azuma M., Sone S. CXCL9 and 11 in patients with pulmonary sarcoidosis: a role of alveolar macrophages. Clin. Exp. Immunol., 2007, Vol. 149, pp. 317-326.Nureki S., Miyazaki E., Ando M., Ueno T., Fukami T., Kumamoto T., Sugisaki K., Tsuda T. Circulating levels of both Th1 and Th2 chemokines are elevated in patients with sarcoidosis. Respir. Med., 2008, Vol. 102, no. 2, pp. 239-247.Nureki S., Miyazaki E., Ando M., Ueno T., Fukami T., Kumamoto T., Sugisaki K., Tsuda T. Circulating levels of both Th1 and Th2 chemokines are elevated in patients with sarcoidosis. Respir. Med., 2008, Vol. 102, no. 2, pp. 239-247.Piotrowski W.J., Kiszałkiewicz J., Górski P., Antczak A., Górski W., Pastuszak-Lewandoska D., MigdalskaSęk M., Domańska-Senderowska D., Nawrot E., Czarnecka K.H., Kurmanowska Z., Brzeziańska-Lasota E. Immunoexpression of TGF-β/Smad and VEGF-A proteins in serum and BAL fluid of sarcoidosis patients. BMC Immunol., 2015, Vol. 16, 58. doi: 10.1186/s12865-015-0123-y.Piotrowski W.J., Kiszałkiewicz J., Górski P., Antczak A., Górski W., Pastuszak-Lewandoska D., MigdalskaSęk M., Domańska-Senderowska D., Nawrot E., Czarnecka K.H., Kurmanowska Z., Brzeziańska-Lasota E. Immunoexpression of TGF-β/Smad and VEGF-A proteins in serum and BAL fluid of sarcoidosis patients. BMC Immunol., 2015, Vol. 16, 58. doi: 10.1186/s12865-015-0123-y.Ragusa F. Sarcoidosis and Th1 chemokines. Clin Ter., 2015, Vol. 166, no. 1, pp. 72-76.Ragusa F. Sarcoidosis and Th1 chemokines. Clin Ter., 2015, Vol. 166, no. 1, pp. 72-76.Sakthivel P., Bruder D. Mechanism of granuloma formation in sarcoidosis. Curr. Opin. Hematol., 2017, Vol. 24, no. 1, pp. 59-65.Sakthivel P., Bruder D. Mechanism of granuloma formation in sarcoidosis. Curr. Opin. Hematol., 2017, Vol. 24, no. 1, pp. 59-65.Strieter R.M., Burdick M.D., Gomperts B.N., Belperio J.A., Keane M.P. CXC chemokines in angiogenesis. Cytokine Growth Factor Rev., 2005, Vol. 16, no. 6, pp. 593-609.Strieter R.M., Burdick M.D., Gomperts B.N., Belperio J.A., Keane M.P. CXC chemokines in angiogenesis. Cytokine Growth Factor Rev., 2005, Vol. 16, no. 6, pp. 593-609.Su R., Nguyen M.L., Agarwal M.R., Kirby C., Nguyen C.P., Ramstein J., Darnell E.P., Gomez A.D., Ho M., Woodruff P.G., Koth L.L. Interferon-inducible chemokines reflect severity and progression in sarcoidosis. Respir. Res., 2013, Vol. 14, 121. doi: 10.1186/1465-9921-14-121.Su R., Nguyen M.L., Agarwal M.R., Kirby C., Nguyen C.P., Ramstein J., Darnell E.P., Gomez A.D., Ho M., Woodruff P.G., Koth L.L. Interferon-inducible chemokines reflect severity and progression in sarcoidosis. Respir. Res., 2013, Vol. 14, 121. doi: 10.1186/1465-9921-14-121.Torraca V., Cui C., Boland R., Bebelman J.P., van der Sar A.M., Smit M.J., Siderius M., Spaink H.P., Meijer A.H. The CXCR3-CXCL11 signaling axis mediates macrophage recruitment and dissemination of mycobacterial infection. DMM, 2015, Vol. 8, no. 3, pp. 253-269.Torraca V., Cui C., Boland R., Bebelman J.P., van der Sar A.M., Smit M.J., Siderius M., Spaink H.P., Meijer A.H. The CXCR3-CXCL11 signaling axis mediates macrophage recruitment and dissemination of mycobacterial infection. DMM, 2015, Vol. 8, no. 3, pp. 253-269.Tuleta I., Biener L., Pizarro C., Nickenig G., Skowasch D. Proangiogenic and profibrotic markers in pulmonary sarcoidosis. Adv. Exp. Med. Biol., 2018, Vol. 1114, pp. 57-66.Tuleta I., Biener L., Pizarro C., Nickenig G., Skowasch D. Proangiogenic and profibrotic markers in pulmonary sarcoidosis. Adv. Exp. Med. Biol., 2018, Vol. 1114, pp. 57-66.Ziora D., Jastrzębski D., Adamek M., Czuba Z., Kozielski J.J., Grzanka A., Kasperska-Zajac A. Circulating concentration of markers of angiogenic activity in patients with sarcoidosis and idiopathic pulmonary fibrosis. BMC Pulm Med., Vol. 2015, Vol. 15, 113. doi: 10.1186/s12890-015-0110-3.Ziora D., Jastrzębski D., Adamek M., Czuba Z., Kozielski J.J., Grzanka A., Kasperska-Zajac A. Circulating concentration of markers of angiogenic activity in patients with sarcoidosis and idiopathic pulmonary fibrosis. BMC Pulm Med., Vol. 2015, Vol. 15, 113. doi: 10.1186/s12890-015-0110-3.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.